9 de junho de 2015
O eletrorretinograma (ERG) é um potencial elétrico gerado pela retina em resposta à luz. Este artigo descreve como usar o ERG para avaliar a função retiniana, em ratos adaptados ao escuro, e como ele pode ser usado para avaliar uma intervenção neuroprotetora, no presente caso o pré-condicionamento isquêmico remoto.
O objetivo geral deste procedimento é testar a função visual em ratos com lesão luminosa normal e isquêmica remota pré-condicionados e lesão leve usando o ERG e, assim, demonstrando os efeitos protetores da isquemia remota de membros na retina. Isso é feito primeiro escurecendo, adaptando os ratos por 12 horas. O segundo passo é registrar o ERG adaptado ao escuro da linha de base usando estímulos de luz LED e um amplificador digital.
Em seguida, sujeite os ratos a um estresse retiniano, expondo-o a uma luz contínua e brilhante. A etapa final é comparar as gravações de ERG dos ratos com danos causados pela luz e aqueles pré-condicionados com isquemia remota do membro, e medir as respostas dos fotorreceptores vistas na onda A e as respostas internas da retina vistas na onda B. Em última análise, o ERG adaptado ao escuro é usado para avaliar a função visual escotópica.
Portanto, este método pode fornecer informações sobre a neuroproteção remota baseada na isquemia. Também pode ser aplicado a outras formas de lesão da retina e testes farmacológicos de doenças, e para a triagem de animais com defeitos visuais. Para iniciar este procedimento, adapte o rato no escuro por 12 horas e, em seguida, anestesieste-o com a injeção de coquetel de cetamina xilazina.
Quando o animal estiver inconsciente, verifique a profundidade da anestesia beliscando levemente o pé para garantir que a resposta reflexa esteja ausente. Em seguida, aplique uma gota de atropina e uma gota de metano de proximidade em sua córnea. Corte em linha preta de 10 centímetros de comprimento.
Em seguida, faça um laço com o fio e deslize o laço sobre o equador do olho, tricotando levemente apertado para puxar o globo ocular ligeiramente para a frente e manter a córnea afastada da pálpebra. Em seguida, aplique colírio carmer nas córneas. Posicione o rato na cama absorvente em cima da plataforma aquecida com a cabeça colocada na abertura do ganzfeld.
Em seguida, insira a sonda de temperatura interna no reto para garantir que a temperatura corporal seja mantida em 37 graus Celsius e prenda a sonda de temperatura na posição prendendo seu cordão na cauda do rato. Em seguida, insira o eletrodo de referência por via subcutânea no membro posterior. Coloque o eletrodo negativo firmemente na boca para evitar que o eletrodo escorregue para fora da boca.
Fixe o cabo de conexão em uma superfície estável. Em seguida, posicione o eletrodo positivo sobre o centro da córnea e certifique-se de que o eletrodo toque a córnea suavemente usando um manipulador microm. Uma vez que os eletrodos estejam no lugar, cubra o orifício configurado, incluindo o ganzfeld e o animal com um material opaco para preservar a adaptação ao escuro.
No software de aquisição. Defina dois kilohertz como taxa de amostragem com cinco milissegundos para amostragem pré-coleta e um tempo de coleta de 100 a 1000 milissegundos. Em seguida, defina os filtros passa-banda para um a 1000 hertz e certifique-se de que a amostragem seja acionada por um período de 100 milissegundos após um flash.
Agora, verifique a linha de base da gravação. Deve estar livre de ruídos estranhos, mas mostrar o ruído do amplificador e a oscilação respiratória. Em seguida, execute um flash de teste.
Esta é uma forma de onda típica de ERG em resposta ao flash de teste. Quando terminar, deixe o animal se readaptar ao escuro por 10 minutos. Em seguida, verifique novamente a linha de base para obter um sinal estável.
Posteriormente, inicie a gravação Ao final da sessão de gravação, verifique a estabilidade da temperatura corporal do animal. Remova os eletrodos e reaplique o polímero cármero nas córneas. Depois, permita que o animal se recupere em uma almofada térmica até que esteja totalmente móvel e ativo antes de retornar ao alojamento do animal.
Esta figura mostra a medição de uma onda e onda B de um ERG adaptado ao escuro. O traço mostrado aqui é registrado da córnea de um olho escuro adaptado a um flash de luz brilhante dado no momento mostrado como T zero. A amplitude de uma onda é medida desde a linha de base até o primeiro vale.
A amplitude da onda B é medida a partir do vale da onda A até o pico positivo seguinte. A latência é medida a partir do artefato de estímulo até o ponto de interesse no traço, como o vale da onda A. O sinal ERG dominado bruto aumenta com o aumento do estímulo luminoso.
Uma onda torna-se aparente em aproximadamente 0,4 logs de segundos de candela escotópica por metro quadrado, e o paradigma de flash duplo tem sido usado para separar o sinal ERG misto em respostas de cone e bastonete. Uma vez dominado. Esta técnica pode ser feita em 30 minutos.
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Este estudo utiliza o eletroretinograma (ERG) para avaliar a função retiniana em ratos adaptados à escuridão. Ele examina especificamente os efeitos neuroprotetores do condicionamento isquêmico remoto sobre as respostas retinianas após estresse induzido pela luz.
A avaliação do eletroretinograma (ERG) em modelos de roedores permite a avaliação quantitativa da função retiniana e de intervenções neuroprotetoras, apoiando a validação precoce de alvos na descoberta de fármacos oftálmicos. A capacidade do protocolo de distinguir respostas de bastonetes e cones e medir desfechos funcionais após o condicionamento isquêmico remoto de membros fornece confiança preditiva para a redução de riscos mecanicistas e a continuidade translacional. Essa abordagem é diretamente relevante para a triagem e priorização de portfólios de estratégias neuroprotetoras em pipelines pré-clínicos.
O protocolo ERG integra desde a descoberta inicial até a validação pré-clínica, apoiando testes de hipóteses, desvio mecanicista de riscos e avaliação quantitativa de intervenções neuroprotetoras.