14 de maio de 2008
Pulgões são transmissores eficazes de vírus de plantas. Microinjeção pulgão do vírus, o procedimento que irá mostrar-lhe hoje, é uma técnica permitindo que os pesquisadores injetam vírus diretamente no hemocele do pulgão, contornando o intestino, uma das duas principais barreiras para a transmissão do vírus de uma maneira circulativo. A mesma técnica também é usada para injetar dsRNA para RNAi.
Se são transmissores eficazes de vírus de plantas, se é por microinjeção do vírus, o procedimento que vamos mostrar hoje é uma técnica que permite aos pesquisadores injetar o vírus diretamente na célula hemocítica do AFib, contornando o intestino, uma das duas barreiras principais para a transmissão do vírus de forma circulativa. Olá, sou Cecilia Tamrin Dehi, pós-doutoranda no departamento de patologia vegetal da Universidade Cornell. Hoje vou mostrar a vocês como injetar vírus nas células hemocíticas do AFI, vírus esse que pode então ser transmitido a diferentes espécies de plantas.
Por exemplo, esta planta de FE está infectada com o vírus do murchamento da batata (PLRV). É possível observar a diferença entre uma planta sadia e uma infectada. O sintoma mais notável é a esclerose taven.
O VPLR é um vírus luteiro que é transportado pelo APHIS em seu hemolinfa, o equivalente inseto ao sangue de mamíferos. Quando um AFI não infectado se alimenta de uma planta infectada, contrai o vírus através do suco da planta, que você pode ver aqui. Após a ingestão, o vírus deve passar do intestino do inseto para a hemolinfa e, em seguida, atravessar a glândula salivar para ser transmitido de volta à planta ESE.
E se for necessário muitos vírus durante a alimentação em uma planta ESE, no entanto, apenas uma fração maior passará pelo intestino e pela glândula salivar. As duas principais barreiras para a transmissão que infectam mais plantas a serem testadas. Se um AFI for inativado para vetar um vírus, alimentamos os AFIs com tecido infectado por dois dias, depois permitimos que se alimentem em uma planta sadia por cinco dias.
A planta é então fumigada e, após três semanas, começamos a buscar sintomas. Quando encontramos um AFib que não consegue transmitir um vírus, podemos avaliar qual das duas barreiras está impedindo a transmissão viral utilizando o procedimento de microinjeção, que vou mostrar a vocês hoje. Neste procedimento, o vírus é injetado diretamente na hemocele, contornando diretamente a barreira de transmissão intestinal.
Então, vamos começar e eu vou mostrar como microinjetar alguns ápices. Este é o vidro, as agulhas de vidro que utilizamos. Nós puxamos as agulhas de vidro a partir dessas hastes de vidro usando o APU apu.
Então, este é o microinjetor. Para realizar a microinjeção de um vírus. Vou começar a inserir a agulha no suporte da agulha.
Então, estou apenas colocando a agulha e posicionando-a. Agora vou carregar o vírus na agulha até o topo deste reservatório. Agora precisamos posicionar o AFI para microinjeção.
Então, vou pegar um AFI com a pressão da dor e vou colocá-lo no suporte do AFI. Idealmente, tentarei posicionar a parte traseira do afídeo contra o suporte para ter acesso à parte abdominal do AFib. Ok, ótimo.
Agora podemos prosseguir com a microinjeção. Ok, agora vou posicionar a agulha e aproximá-la do AFib. Então, agora vou trazer a agulha em contato com o AFib e perfurar o exoesqueleto; o ideal é tentar perfurar entre os segmentos na base das pernas.
Então, vou fazer a injeção. Agora estou retirando o AFI com o pincel e colocando no papel de recuperação, onde vou deixá-lo repousar por um momento. Portanto, também precisamos microinjetar o AFI controle.
Esta microinjeção de controle é realizada apenas com o tampão, sem o vírus. O tampão que utilizamos é tampão fosfato 0,1 M, pH 7. Assim, vou aplicar o afi em uma planta sadia, onde vou mantê-lo por cinco dias; após esse período, vou infectar a planta e aguardar o desenvolvimento de sintomas após a microinjeção do ácido nucleico de fita simples durante uma semana. A cada dia, o nível de expressão do gene alvo é medido no afi.
Então, acabamos de microinjetar um AFI que era incapaz de transmitir o vírus. Se, após a microinjeção, o AFI for capaz de transmitir o vírus, isso significará que esse AFI possui uma barreira intestinal que estava bloqueando o vírus. Se, por outro lado, não houver desenvolvimento de sintomas, significará que esse AFI possui uma barreira forte nas glândulas salivares.
Portanto, acabamos de mostrar como microinjetar vírus nos afídeos. Esse mesmo procedimento é utilizado para microinjetar RNA de fita simples nos afídeos e realizar interferência por RNAi, uma técnica interessante para auxiliar no estudo da função gênica em afídeos. Assim, conclui-se a microinjeção.
Espero que goste e que seja útil para os seus experimentos. Obrigado.
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Os afídeos atuam como transmissores eficazes de vírus de plantas. Este artigo demonstra uma técnica de microinjeção que permite aos pesquisadores injetar vírus diretamente no hemocélio de afídeos, contornando o intestino, que é uma barreira significativa para a transmissão de vírus.
A dissecação de barreiras fisiológicas à transmissão viral em afídeos por meio de microinjeção permite a validação precisa de alvos relacionados à capacidade vetorial em modelos agrícolas de patógenos. Essa abordagem esclarece os gargalos mecanicistas na passagem do vírus, reforçando a confiança preditiva em pesquisas translacionais de patologia vegetal e biologia de vetores. O método orienta decisões ajustadas ao risco em estratégias de pipeline voltadas à mitigação de doenças transmitidas por vetores.
Este método de microinjeção integra-se na interface entre a descoberta inicial e a validação pré-clínica em fluxos de trabalho de biologia de vetores e patologia de plantas.