11 января 2011 г.
В этой статье мы описали процедуру хирургии и обработки советы для имплантации ультратонкие полиимидные основе микроэлектрода массива (PBM-массива) на мыши череп на приобретение высокой плотности энцефалографии (ЭЭГ) в мышиной модели.
Здравствуйте, я Мина Ли из лаборатории Gen Choice в Центре нейронаук Корейского института науки и технологий. Сегодня мы продемонстрируем условия регистрации ЭЭГ высокой плотности на модели мыши с использованием полимерного микроэлектродного массива. Процедура включает настройку оборудования, подготовку животных к операции и проведение стереотаксической хирургии.
После операции мы проведем запись ЭЭГ, а затем проанализируем данные. Приступим. Перед началом операции подготовьте стереотаксические инструменты и все необходимые материалы.
Окружающая среда должна быть чистой. Подготовьте мышь к операции. Сегодня я продемонстрирую выполнение операции на 17-недельной гибридной мыши линии basic six black six J 1 29 s four S-V-J-A-E.
Также можно использовать мышей с массой тела более 25 граммов. Анестезируйте мышь путем внутрибрюшинного введения коктейля, содержащего 120 mg/kg кетамина и 6 mg/kg ксилазина. Осторожно ущипните мышь за хвост или лапу, чтобы убедиться, что животное находится в достаточно глубоком состоянии наркоза для проведения операции.
Для начала операции закрепите животное в стереотаксическом аппарате. Поочередно установите ушные бары в ушные каналы мыши и плотно зафиксируйте их. Нанесите немного метанола на голову животного, после чего сбрейте шерсть с головы.
Сделайте инъекцию, затем проведите разрез в передне-заднем направлении от области между глаз до области между ушами и черепом. Зажмите кожу мыши микрозажимами, чтобы поддерживать разрез широко открытым. Удалите любые оставшиеся ткани или мембраны с черепа с помощью стерильных ватных тампонов.
Подведите маркер к голове. Отметьте лямбда-точки BMA. Затем уберите маркер и отметьте эти точки с помощью старого лучшего пера.
Точно в цель. В заданную точку. Поднесите пленочный электрод к голове и нанесите каплю воды T на череп.
Поместите BMA на середину пятого слоя Ontario полимерного многоэлектродного массива. Осторожно протрите пленку от медиальной к латеральной стороне ватными палочками, смоченными в мягкой воде. Подождите несколько минут до полного высыхания.
Это способствует лучшей адгезии. Поставьте три метки масляным маркером в свободном пространстве. В этих точках необходимо будет произвести сверление.
При сверлении отверстий будьте предельно осторожны, чтобы не повредить внутренние ткани. Установите три фиксирующих винта на череп и закручивайте их до плотной фиксации. Приготовьте густую смесь стоматологического цемента и покройте ею винты электродов и остальную часть черепа.
Приготовьте еще одну порцию и используйте ее, чтобы полностью покрыть электрод. Снова откройте доступ к винтам, чтобы закрепить его. Помните, что этот элемент не должен находиться под пленкой электрода.
Прикрепите двойной знак с лентой на заднюю часть плоскости коннектора. С помощью сильного клея зафиксируйте жесткую палочку в качестве стяжки посередине черепа. В сегодняшнем эксперименте для этого этапа с палочкой я использую кончик ватного тампона, перемещая коннектор назад до тех пор, пока он не соприкоснется с кончиком тампона.
Расстояние между черепом и коннектором должно составлять более пяти миллиметров. Приклейте плоскость коннектора к кончику ватной палочки, используя сильный клей. Остальную открытую область залейте акриловым цементом.
После отверждения цемента снимите зажимы и осторожно пошевелите кожей. Извлеките мышь из паруса и закройте свободное пространство. С помощью акрилового стоматологического цемента нанесите антибиотик натрия вокруг цемента и области шва.
Поместите мышь в отдельную клетку и предоставьте ей пять дней для восстановления. Подключите мышь к ЭЭГ, закрепите электроды и подождите более одного часа для привыкания. Через час проведите запись ЭЭГ; мы осуществили регистрацию ЭЭГ высокого разрешения на модели мыши с использованием полимерного микроэлектродного массива.
При выполнении данной процедуры важно помнить о необходимости бережного обращения с пленкой electro Tri, так как ее толщина составляет всего семь микрометров. При перемещении электрода необходимо использовать каплю водопроводной воды. Если пропустить этот шаг, электрод может легко повернуться; также следует убедиться, что акриловый герметик высокой вязкости не просочился под пленку.
После записи мы проводим офлайн-анализ с помощью meth lab для построения нескольких графиков активности мозга с целью четкой визуализации мозговой активности у мышей. Здесь представлены репрезентативные многоканальные сигналы ЭЭГ после инъекции GBL. На левой панели показаны репрезентативные многоканальные сигналы ЭЭГ, а на правой панели — сигналы после инъекции GBL.
Представлены карты топографии мозга, такие как средняя временная задержка мощности, средняя амплитуда пика и средняя карта вероятности начала приступа. На этом всё. Спасибо за просмотр.
В данной статье демонстрируется хирургическая процедура имплантации микроэлектродной матрицы на основе полиимида (PBM-array) на череп мыши, что позволяет осуществлять высокоплотную регистрацию ЭЭГ на мышиной модели.
ЭЭГ с высокой плотностью электродов у свободно передвигающихся мышей позволяет снизить риски при проверке гипотез о нейронных цепях, связывая электрофизиологические признаки с поведением в генетически модифицируемых моделях. Данный подход способствует валидации мишеней при разработке нейропсихиатрических препаратов, обеспечивая количественные и воспроизводимые показатели сетевой активности, имеющие отношение к механизмам заболевания. Микроэлектродная матрица на основе полиимида повышает точность сигнала и возможность хронической записи, что увеличивает прогностическую достоверность при оценке эффективности на доклиническом этапе.
Данный метод интегрируется в непрерывный процесс поиска лекарственных средств — от генерации гипотез до оптимизации соединений-лидеров — предоставляя динамические нейронные данные системного уровня, которые позволяют обосновать выбор мишени и приоритизацию соединений.