$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Hayvan çalışması protokolü, Chongqing Tıp Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC-CQMU-2025-10073) tarafından onaylanmıştır.
Sesquiterpene lakton-zenginleştirilmiş fraksiyonun (SLEL) hazırlanması
Eupatorium lindleyanum DC'nin kurutulmuş tıbbi maddeleri. Düşük basınçta %70 (v/v) etanol ile 2 kez reflü ekstraksiyonuna maruz bırakıldı. Her ekstraksiyon, 2 saat boyunca 10:1 (v/w) çözücü-malzeme oranıyla yapıldı. Birleşik özetler filtrelenip ≤60 °C'de azaltılmış basınç altında konsantre edildi ve ardından ham etanol ekstraktı tozu elde etmek için vakumda dondurularak kurutuldu.
Kurutulmuş ekstrakt, damıtılmış suda tamamen çözündürüldü (nihai konsantrasyon: 100 mg/mL) ve sıralı olarak poliamid reçine kromatografisine maruz bırakıldı, ardından sesquiterpene laktonlarını zenginleştirmek için D101 makrogözenekli adsorpsiyon reçine kromatografisi yapıldı. Adsorbüm dengesi sağlandıktan sonra, D101 reçineyi kutup safsızlıklarını gidermek için damıtılmış su ile yıkanır ve ardından susuz etanol ile elütör edilir. Etanol elülasyonu sonrası, toplanan fraksiyon azaltılmış basınç altında yoğunlaştırılır ve SLEL fraksiyonu elde edilmek için dondurularak kurutma işlemi yapılır; SLEL fraksiyonu −20 °C'de saklanır ve kullanıma kadar saklanır.
Ayrım, asetonitril ve %0,1 (v/v) formik asit içeren ikili mobil faz sistemi kullanılarak bir UPLC platformunda gerçekleştirildi. Gradyent programı, düşük organik içerikte ilk 25 dakikalık izokratik tutma, %70 asetonitrile kısa bir doğrusal rampa, %90 asetonitrile yüksek organik basamak aşaması ve başlangıç koşullarına dönüş son dengeleme aşamasından oluşuyordu. Sistem, 35 °C sütun sıcaklığı ve 0,1 μL enjeksiyon hacmiyle 0,25 mL·min⁻1 hızında çalıştırıldı (Ek Şekil S1).
Hayvanlar
Bu çalışmada toplam 36 erkek Sprague–Dawley faresi (200 ± 20 g) ve 36 erkek BALB/c faresi (20 ± 2 g) kullanıldı. Hayvanlar standart koşullarda (22 ± 2 °C, 55 ± %5 nem, 12 saat ışık/karanlık döngü) ve serbest yiyecek ve suya erişim sağlanıyordu. Hayvanlar deneyden önce 7 gün boyunca uyum sağladı ve genel sağlık açısından günlük olarak izlendi. Tüm işlemler hayvan acısını en aza indirmek için yapıldı ve kan alımı ile doku hasadı öncesinde anestezi uygulandı.
Farelerde ksilen kaynaklı kulak ödemi
Fare kulak ödemi modeli, daha önce açıklandığı gibikurulmuştur 9. Alışma sonrası fareler rastgele olarak altı gruba (n = 6 grup başına ayrıldı): kontrol (CG), model (MG), deksametazon (DEX, 10 mg/kg) ve SLEL düşük dozlu (75 mg/kg), orta dozlu (150 mg/kg) ve yüksek dozlu (300 mg/kg) gruplar. Tüm tedaviler, 7 gün ardışık olarak günde bir kez oral gavaja ile uygulandı (nihai doz hacmi: 10 mL/kg). Son uygulamadan 1,5 saat sonra, kontrol grubu hariç sağ kulağın her iki yüzeyine 30 μL ksilen eşit şekilde uygulanarak iltihap indüklenmiştir. Otuz dakika sonra fareler anestezi edildi, kan örnekleri alındı ve her iki kulağın aynı anatomik pozisyonlarından 8 mm dairesel kulak yumrukları alındı.
Farelerde karragenan kaynaklı pati ödemi
Fare pençesi ödemi modeli, daha önce tanımlandığı gibi karragen kullanılarakoluşturulmuştur 10. Fareler rastgele olarak altı gruba (n = 6 grup başına yerleştirildi): CG, MG, DEX (5 mg/kg) ve SLEL düşük doz (50 mg/kg), orta doz (100 mg/kg) ve yüksek doz (200 mg/kg) gruplar. Tedaviler günde bir kez 7 gün boyunca (10 mL/kg) ağızdan uygulandı. Son dozdan önce temel pençe hacimleri ölçüldü. Son uygulamadan otuz dakika sonra, 0,1 mL %1 (w/v) karragenan solüsyeni sağ arka patinin plantar yüzeyine deri altı enjekte edildi. Enjeksiyondan sonra 1, 2, 3 ve 4 saat içinde pençe hacimleri pletismometre kullanılarak ölçüldü. Paw ödemi şu şekilde hesaplandı:
Paw ödemi (%) = (Vt − V0) / V0 ×% 100
Histolojik muayene
Fonksiyonel değerlendirmelerden hemen sonra kulak ve pati dokuları toplandı. Dokular, oda sıcaklığında %10 nötr tamponlu formalinde 72 saat boyunca sabitlenmiş, parafine gömülü, 5 μm kesitlenmiş ve standartprotokoller 11'e göre H&E ile boyanmıştır.
Enzimle bağlantılı immünosorbent testi (ELISA)
Serum örnekleri 3.000 × g sıcaklıkta, 4 °C'de 10 dakika boyunca santrifüjle alındı. TNF-α, IL-6 ve IL-1β seviyeleri, standart protokollere göre ticari olarak mevcut ELISA kitleri kullanılarak nicelendirildi.
Western Blot analizi
Kulak ve pati dokularından toplam protein özleri, RIPA lizis tamponu kullanılarak proteaz ve fosfataz inhibitörleriyle desteklenerek hazırlanmıştır. Protein konsantrasyonları BCA testi kullanılarak nicelendirildi ve eşit miktarda protein (örnek başına 30 μg) SDS-PAGE ile çözülerek PVDF membranlarına aktarıldı. Zarlar oda sıcaklığında %5 yağsız sütle 1 saat bloklandı, ardından gece boyunca 4 °C'de birincil antikorlarla ve oda sıcaklığında 1 saat boyunca HRP ile konjuge ikincil antikorlarla inkubasyon yapıldı. İmmünoreaktif bantlar, geliştirilmiş kemilyüminsans kullanılarak tespit edildi ve ImageJ yazılımıyla nicelendirildi.
Nicel gerçek zamanlı PCR (qRT-PCR)
Toplam RNA, Materyaller Tablosu'nda listelenen RNA ekstraksiyon reaktifiyle kulak ve pati dokularından izole edildi. Toplam RNA'nın bir mikrogramı, üreticinin talimatlarına göre ticari bir ters transkripsiyon kiti kullanılarak cDNA'ya ters transkribe edildi. Nicel PCR, SYBR Green kimyası, gen spesifik primerlerle (Tablo 1) 10 μL reaksiyon hacminde, iki aşamalı amplifikasyon protokolü altında gerçekleştirildi. Ayrıntılı ters transkripsiyon koşulları ve PCR döngüsü parametreleri Protokol bölümünde sunulmaktadır. Göreceli transkript seviyeleri 2⁻ΔΔCT yöntemiyle hesaplandı ve Gapdh dahili referans gen olarak kullanıldı.
Veri ve istatistiksel analiz
Veriler ortalama ± SD olarak ifade edilir. İki grup arasında istatistiksel karşılaştırmalar eşleşmemiş Student's t-testi kullanılarak yapılırken, iki gruptan fazla olan analizlerde tek yönlü ANOVA uygulanmıştır. İstatistiksel anlamlılık p < 0.05 olarak tanımlandı. Anlamlılık, kontrol grubuna (CG) karşı # p < 0.05 ve ## p < 0.01 , model grubuna (MG) karşı * p < 0.05 ve ** p < 0.01 olarak gösterilir.