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$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
取一培养基因改造细菌。
诱导细菌表达一种具有缺陷性校对活性的DNA聚合酶突变体,从而增加复制错误的概率。
这些错误可能导致调控区发生自发突变,从而解除对β-葡萄糖苷酶基因的抑制,进而触发β-葡萄糖苷酶酶的表达。
在规定的时间间隔采集样品,并评估每种培养物中的细菌增代次数。离心样品后弃去上清液。
用缓冲液重悬沉淀。
加入透化溶液并混匀,以透化细菌膜。
将透化的细菌样品转移至多孔板中。
加入一种能够进入细菌并与β-葡萄糖苷酶反应的底物,产生有色产物。
测定颜色强度以确定β-葡萄糖苷酶活性。
分析细菌培养物中的β-葡萄糖苷酶活性,以确定跨代突变频率。
将一株含有 pBAD-ε 和 pGOOD1-εD12A11 质粒的 E. coli TOP10 单菌落转移至 1 毫升添加了抗生素的 LB 培养基中。
在 37 摄氏度下将培养物过夜培养。次日早晨,将预培养物按 1:250 的比例稀释至三个含有 10 毫升新鲜培养基的锥形瓶中。分别加入终浓度为 1 毫摩尔的诱导剂阿拉伯糖、IPTG,或同时加入阿拉伯糖和 IPTG,然后在 37 摄氏度下诱导培养 8 小时。
同时准备未诱导的培养物。取一毫升等分试样,将其按1:500稀释至含有10毫升新鲜培养基的新培养瓶中,培养基中可添加或不添加诱导剂。随后将混合物在37摄氏度下过夜培养。
第二天,从预培养物的稀释步骤开始重复操作,并收集一毫升等分试样。然后将等分试样置于冷冻箱中。
接下来,确定每种培养物中发生的世代数。取100 µL适当系列稀释的接种物和培养物,转移至LB平板上。
将培养皿在 37 摄氏度下孵育过夜。次日早晨,计数 LB 培养皿上的菌落。
计算接种物中的细胞数量(log I)以及生长结束时培养物中的细胞数量(log C)的对数值,并确定世代数。
然后在5,000 ×g 条件下离心培养物20分钟,并将细胞重悬于1毫升50毫摩尔 Tris-HCl(pH 7.6)、50毫摩尔 NaCl溶液中。
为了透化细胞,加入两到三滴氯仿并涡旋振荡20秒。
最后,在96孔微孔板中测定每份等分试样的葡萄糖苷酶活性。
向每个孔中加入100 µL透化细胞和100 µL以对硝基苯基-β-D-吡喃葡萄糖苷(p-nitrophenyl-D-glucopyranoside)为底物的溶液,注意避免在孔中产生气泡。
使用微孔板读数仪和滤光片在 420 纳米处读取吸光度。