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从一只已处死且膀胱暴露的小鼠开始,该小鼠预先感染了致病性细菌。
细菌侵入尿路上皮并形成菌落。成熟后,这些细菌破裂上皮细胞并感染周围细胞。
插入连接有装满固定液的注射器的导管。缓慢注入固定液以膨胀膀胱并保存其结构。
夹闭尿道以保留固定液并维持膀胱形态。
移除导管,然后切断尿道。将膀胱转移至新鲜固定液中孵育,以保存其结构。
将膀胱切成两个半膀胱杯状以暴露尿路上皮,并用缓冲液冲洗。
使用基于金属的试剂染色以增强对比度,然后用超纯水洗涤。
使用梯度乙醇脱水,随后进行临界点干燥。
将每个干燥的膀胱杯切成两半。
样本现已准备好进行下游处理,以可视化宿主-病原体相互作用。
使用带有固定液的结核菌素滑动针头注射器后,在其末端安装导管,导管斜面朝向应与注射器刻度相反。
从针头末端剪去1至2毫米的多余导管,注意不要暴露针尖。轻弹注射器以去除气泡,并推动推杆排出空气。然后在微型离心管上方用固定液充满导管。麻醉并处死小鼠后,待四肢固定,用镊子和手术剪刀打开小鼠的盆腔区域以暴露膀胱。小心地拨开周围的脂肪组织,但保持膀胱原位不动。
用惯用手握住注射器,针头朝下。将导管尖端浸入无菌润滑剂中,然后将导管尖端置于小鼠尿道口处,手持注射器筒体,使其与小鼠身体呈30至45度角。
用轻微的顺时针动作向下施加压力,轻柔地将导管插入尿道。当导管尖端进入尿道时,将注射器向小鼠尾部方向转动,同时继续将导管进一步推入尿道,直至注射器筒体与操作台面平行。整个导管针轴应完全进入小鼠体内,使导管尖端位于膀胱腔内。缓慢注入50至80 µL固定液,使膀胱像气球一样膨胀。
保持导管位置不变,略微抬起注射器,使针尖向上倾斜。用另一只手打开止血钳,将其中一个钳臂滑入导管针下方,位于尿道交界处。部分闭合止血钳,使其刚好与针头接触。
轻轻将导管针从膀胱中抽出,同时完全夹紧并锁定止血钳,以防止固定液丢失。握住止血钳,使其与工作台面平行,膀胱置于其上方。轻柔抬起,小心地在止血钳下方剪切,将膀胱连同仍附着的止血钳一同取下。
将膀胱及附带的止血钳放入含有预热固定液的 Falcon 管中。确保膀胱完全浸没在液体中,且未紧贴管壁。
为了通过扫描电子显微镜观察膀胱,需使用洁净的双面剃须刀片或手术刀沿矢状面将膀胱切为两半,并沿止血钳方向做第二个切口以释放膀胱。这样可得到两个半膀胱杯状结构。如果膀胱外部仍残留脂肪组织,应轻轻将其去除。
用二甲胂酸钠缓冲液将膀胱半叶冲洗三次。在0.15摩尔的二甲胂酸钠缓冲液中加入1%四氧化锇,于室温下对组织染色1小时。此步骤需用铝箔包裹染色容器,以保持黑暗环境。染色后,用超纯水将膀胱半叶冲洗三次。
如果在水表面看到有锇酸处理过的油状物,应吸除或用吸水纸吸走,以防止在干燥步骤中造成污染。组织脱水后,使用干净的双面刀片将膀胱半片各切成两半,共得到四块组织。