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两种蛋白质伙伴之间的物理相互作用可调节下游的生物学机制。
为了利用酶联免疫吸附测定(ELISA)检测蛋白质-蛋白质相互作用,取一个多孔免疫测定板,加入含有相互作用蛋白之一——诱饵蛋白——的包被缓冲液,并进行孵育。诱饵蛋白将吸附到孔壁表面。 通过 非特异性疏水相互作用
弃去废液,用缓冲液洗涤平板以去除未结合的蛋白质。加入封闭液并孵育,使封闭液中的封闭剂分子阻断孔表面的非特异性结合位点。
加入带有组氨酸标签的相互作用蛋白(即“猎物”蛋白),以便于定量。孵育,使“猎物”蛋白特异性结合其相互作用伴侣——“诱饵”蛋白。随后加入与辣根过氧化物酶偶联的抗组氨酸抗体溶液,该抗体可结合“猎物”蛋白,形成“诱饵-猎物-抗体”复合物。
用移液器吸取含有酶底物和过氧化氢的溶液,并进行孵育。
辣根过氧化物酶利用过氧化氢催化其底物的氧化反应,生成蓝色产物。加入酸性溶液使酶变性以终止反应,形成黄色反应产物。
使用微孔板读数仪测量产物的颜色强度,该强度与结合的猎物蛋白量成正比,表明蛋白质-蛋白质相互作用成功发生。
为进行ELISA实验,向Polysorp微孔板的每个孔中加入100 µL蛋白溶液。用盖板密封微孔板,并于4°C下孵育过夜,以促进蛋白在微孔板孔壁上的固定。将微孔板倒置于水槽上方,弃去孔内溶液。随后,每孔加入300 µL PBS,洗涤3次。
用含2.5%(质量体积比)BSA的PBS在室温下封闭包被好的孔,封闭1小时。移除封闭液后,每孔加入300 µL PBST,洗涤3次。然后,向每个样品孔中加入100 µL 50 nmol/L的重组His标签PH蛋白。在对照孔中仅加入100 µL PBS-BSA。将酶标板在室温下孵育1小时。
孵育结束后,弃去蛋白溶液,并用300微升PBST每孔洗涤三次,以去除未结合的蛋白。然后,每孔加入100微升PBS-BSA,其中含有辣根过氧化物酶标记的抗His多克隆抗体。
室温孵育1小时后,每孔加入300微升PBST,洗涤3次。每孔加入100微升ELISA检测试剂,以检测抗原-抗体复合物。然后每孔加入50微升1摩尔硫酸以终止反应。使用酶标仪在450纳米处测定各孔的光密度。