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从含有琼脂糖包埋的、麻醉的转基因斑马鱼幼鱼的培养皿开始,这些幼鱼的白细胞(吞噬性免疫细胞)中表达光转换荧光蛋白。
预先注入红色荧光染料标记细菌的左侧耳囊平贴于培养皿底部。
在耳泡内,预先注射的细菌引起局部感染,触发免疫细胞迁移和趋化因子释放,导致白细胞浸润至耳泡内。
在荧光显微镜下,观察绿色白细胞在感染部位的初始募集以及白细胞对红色细菌的吞噬作用。
使用405纳米波长照射耳泡,不可逆地将光转化荧光蛋白从绿色转变为红色,并使白细胞呈现红色荧光——从而实现对白细胞的清晰可视化和精确追踪。
现在,在不同深度下以两种不同波长观察幼虫,从而实现对光转化后的红色荧光和残留的绿色荧光白细胞的可视化。
光转化后的红色白细胞从耳囊扩散并散布至全身,从而实现基于光转化的白细胞示踪。
在体视显微镜载物台上,根据文本方案制备含三卡因的琼脂糖后,使用移液管将四到五条麻醉后的幼虫转移至玻璃底培养皿中。将三卡因和琼脂糖溶液从55摄氏度水浴中取出,在室温下冷却1至2分钟。
在此期间,尽可能吸除麻醉后幼虫中的液体。接着,将冷却的琼脂糖倒入培养皿中,直至覆盖约一半的表面。然后轻轻摇晃培养皿以铺展琼脂糖。将漂浮到培养皿边缘的幼虫拾起,并用移液器将其转移回中央。随后,在体视显微镜下,使用长型移液器吸头轻柔地将幼虫调整至所需位置。
为了成像耳囊,应将幼鱼放置成右侧耳囊朝上,左侧耳囊紧贴培养皿底部。让琼脂糖冷却约10分钟后再移动培养皿。随后,用移液器轻轻在琼脂糖层上方加入一些三卡因和E3溶液,以保持其湿润。
为了观察样本,使用488纳米和543纳米激光进行z轴扫描。采用连续线扫描模式调节激光功率和探测器增益。确认不存在意外光转化的红色荧光。在“图像采集控制”窗口的“刺激设置”下,选择“使用扫描仪”工具,并选择“主”。选择405纳米激光,并将其功率设置为70%。然后,使用圆形选项,在耳泡内定义感兴趣区域。
在“刺激开始设置”中,选择“序列激活”,预激活设为1帧,激活时间为60,000毫秒。在“采集设置”窗口的“时间扫描”部分,选择两个以分钟为单位的时间间隔,分别用于光转化前和光转化后。启动延时成像序列,以开始对选定的兴趣区域进行光转化。最后,使用z轴层扫以及488纳米和543纳米激光扫描样品,以观察光转化后的红色荧光以及残留的绿色荧光。