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从已将胸苷核苷类似物 IdU 整合到 DNA 中的癌细胞开始。当这些细胞遇到复制应激时,其 DNA 合成会停止,暴露出单链 DNA 区域中的 IdU。
固定细胞并加入去垢剂分子,以增加细胞膜的通透性。
加入 BSA 以阻断非靶标抗体结合位点。
加入与IdU标记的单链DNA结合的抗IdU抗体。
加入针对抗IdU抗体的绿色荧光标记二抗。去除未结合的抗体。
将盖玻片置于载玻片上,载玻片上含有带荧光染料的封片剂——该染料可对细胞核进行染色。
在荧光显微镜下观察蓝色的细胞核。
绿色荧光焦点代表抗体与单链 DNA 的结合。
通过计数焦点数量来量化复制应激水平。
在置于24孔板孔内的聚-L-赖氨酸盖玻片上加入1毫升细胞悬液,并在标准条件下于培养基中培养细胞。经过一个群体倍增后,吸去孔板中的原有培养基,并用10 µM的IdU对细胞进行脉冲处理,持续两个后续的群体倍增期。
收获细胞时,将培养基替换为预冷的含0.5% PBSTx的溶液,冰上孵育5分钟。固定细胞时,吸去PBSTx,室温下用3%多聚甲醛孵育细胞15分钟。用PBS洗涤3至4次后,将固定后的细胞于4摄氏度保存,以备后续使用。
固定后,在冰上用0.5% PBSTx处理细胞5分钟,确保完全覆盖盖玻片。随后在室温下用1毫升0.2% PBST洗涤细胞3至4次,吸除PBST,并用PBS配制的5% BSA在室温下封闭样本30分钟。
进行免疫染色时,准备一个加湿的孵育盒:在平底塑料盒内放入一张湿润的纸巾。用 Parafilm 封住 24 孔板的盖子,并将其放入加湿孵育盒中,然后将盖玻片平铺在板盖上。在盖玻片上方加入 60 微升稀释后的抗 BrdU 小鼠一抗。
或者,为减少抗体干燥并减少用量,可在Parafilm上滴加一滴稀释后的抗体,然后将盖玻片倒置覆盖在液滴上。随后在37摄氏度孵育1小时。孵育结束后,吸除一抗。
将盖玻片放回24孔板中,用0.2% PBST洗涤4次。按照之前的方法,在盖玻片上加入稀释的二抗,室温避光孵育1小时。标记载玻片,并用含DAPI的封片剂将盖玻片封固在载玻片上。如果封片剂需要固化或硬化,则将载玻片置于室温避光处保存24小时。