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将小鼠海马脑片置于充满人工脑脊液(aCSF)的浸没式记录室中。
使用固定网固定切片,以防止移动。
持续灌注含氧人工脑脊液以维持神经元活性。
安装参考电极以提供稳定的电压参考。
将刺激电极和记录电极与海马CA1区锥体细胞层平行并对齐放置。
施加电脉冲。
这些脉冲刺激神经元,导致电压门控离子通道开放,允许正离子内流,从而引发动作电位。
这些动作电位沿神经元传播,并诱导兴奋性神经递质释放到突触间隙中。
神经递质与突触后神经元上的特异性受体结合,导致正离子内流,从而引起膜电位的变化——即兴奋性突触后电位(EPSP)。
记录电极测量记录区域内一群神经元的兴奋性突触后电位——即场兴奋性突触后电位(field EPSP)。
将一小片镜头纸和固定在U形铂金丝上的尼龙网在浸入式切片室中预浸泡几分钟。之后,移除U形铂金丝。关闭循环,将切片放置在镜头纸上。然后立即将承载切片的网膜放在切片上方。
打开泵,让切片在不将物镜浸入ACSF的情况下平衡30分钟。在此期间,用ACSF填充记录电极,并将其安装到移液管持 holder 中。
接下来,将经过测试的环氧树脂绝缘钨刺激电极放入操纵器夹持器中,并将参考导线置于切片室中。在室中添加第二个参考电极,并将其连接至记录电极头级的参考插座。
在放大器控制软件中,单击零钳位模式框,然后双击输出增益列表框,选择增益为 100。双击高通滤波器列表框中的 bessel,选择 3 千赫兹,再双击低通滤波器列表框中的 AC,选择 0.1 赫兹。
在记录软件中,点击 Acquire Open Protocol。选择一个具备以下设置的方案:允许进行事件相关刺激,以每秒10至20千赫兹的采样率对放大后的电位进行50至100毫秒的数字化采集,并在开始片段记录10毫秒后自动触发电刺激隔离器。
将刺激电极和记录电极放置在与锥体细胞层平行且成一直线的位置。随后,点击 采集 编辑 协议,并在弹出窗口中选择 触发 选项卡。点击 触发 源 框,并选择 空格键 作为触发源。然后,点击 确定 按钮,并点击 记录 按钮以开始数据采集。
在刺激隔离器软件中,点击电压控制箱,输入零值,然后点击下载按钮。接着,点击记录软件窗口并按下空格键。重复此循环,依次输入从 1,000 到 8,000 的数值。将刺激强度与 FEPSP 斜率值进行关联,确定获得 FEPSP 斜率最大值 40% 所需的刺激强度。点击电压控制框并输入已确定的数值,然后点击下载按钮。
在记录软件中,单击停止按钮,然后单击采集菜单。在弹出窗口中点击编辑方案,并选择触发选项卡。随后,单击触发源框,并选择内部定时器作为触发源。单击确定按钮,然后单击记录按钮,以开始每60秒自动记录一次场电位。30至60分钟后,单击停止按钮。
在记录软件中,点击 采集 打开 协议,并选择与基线记录相同的协议。点击 确定 按钮,然后点击 记录。自动持续运行场电位记录 2 至 4 小时。完成后,点击 停止 按钮以终止记录。