2017年3月21日
选择性标记的荧光GnRH-I、-II和-III衍生物是追踪和定量其细胞摄取的可靠工具。 本文介绍了在多种细胞系中可视化、定量和比较这些GnRH偶联物摄取效率的实验方法。
本实验的总体目标是研究并预测基于GnRH的药物递送系统在人类癌细胞培养中的有效性。该方法有助于回答靶向抗癌治疗领域中的关键问题,例如不同人类癌症类型的细胞对GnRH靶向抗癌药物的摄取效率如何。该方法的主要优势在于使用了新型荧光标记的GnRH类似物,可同时用于共聚焦显微镜和流式细胞术分析。
该技术在抗癌治疗方面具有重要意义,因为促性腺激素释放激素(GnRH)受体在多种癌细胞类型上高度表达,从而能够实现对这些细胞的选择性靶向。本次实验操作将由我实验室的博士研究生 Bianka Gurbi 进行演示。首先,从已接种细胞的显微镜载玻片的七个孔中分别移除培养液。
然后,向阴性对照孔中加入 250 µL 预热的完全培养基,向其余六个孔中各加入 250 µL 预热的 GnRH fit 种子处理培养基。将玻片置于 37 °C、5% 二氧化碳的培养箱中孵育 5 小时。孵育 5 小时后,吸去各孔中的培养基,并用 250 µL PBS 洗涤细胞。
随后,向每个孔中加入 250 µL 固定液,在室温下孵育载玻片 10 分钟。细胞固定后,弃去固定液,并用 250 µL PBS 洗涤细胞。向每个孔中加入 250 µL 用 PBS 配制的 5 µM 荧光探针溶液,在室温下孵育载玻片 10 分钟。
去除荧光探针溶液后,用 250 微升 PBS 小心洗涤细胞两次。最后,向每个孔中加入三到四滴封片介质。将载玻片置于室温避光处,直至在显微镜下观察成像。
从接种了细胞的显微镜载玻片的五个孔中移除培养基。接着,向阴性对照孔以及未处理细胞的第二个孔中各加入 250 微升预热的完全培养基。用含有 10 微摩尔 GnRH FITC 的预热处理培养基对剩余三个孔中的细胞进行预处理。
将载玻片置于37摄氏度、5%二氧化碳的培养箱中孵育1小时。随后,仅移除处理组细胞的培养基,并用250微升预热的完全培养基洗涤细胞。接着,移除洗涤用培养基。
然后,向三个孔中每个孔加入 250 µL 预热的完全培养基。将玻片置于 37 °C、5% 二氧化碳的培养箱中孵育 1 小时。孵育结束后,弃去全部五个孔中的培养基,并用 250 µL PBS 洗涤细胞。
然后,移除 PBS,并在室温下用 250 微升固定液固定细胞 10 分钟。接着,弃去固定液,用 250 微升 PBS 洗涤细胞。向每个孔中加入 250 微升封闭液,并在室温下孵育载玻片 1 小时。
除阴性对照外,吸出各孔中的封闭液。用250 µL PBS洗涤细胞后,向每孔加入250 µL一抗溶液。将玻片置于避光处,室温孵育1小时。
从五个孔中移除溶液,并用 250 µL PBS 洗涤细胞。然后移除 PBS,加入 250 µL 二抗溶液。将玻片在室温下避光孵育一小时。
吸出每孔中的溶液,用 250 µL PBS 洗涤细胞。去除洗涤用 PBS 后,向每孔中加入含 5 µM 荧光探针的 250 µL PBS。将玻片在室温下孵育 10 分钟。
从每个孔中移除荧光探针溶液,并用 250 微升 PBS 小心洗涤细胞两次。最后,向每个孔中加入三到四滴封片介质。将载玻片置于室温避光处,直至在显微镜下成像。
在倒置共聚焦激光扫描显微镜下观察细胞。打开 488 纳米和 633 纳米激光器。检查激光放大倍数和针孔大小。
对阴性对照样本进行成像。优化观察到的细胞核信号,并调整 FITC 和 Alexa 546 的信号,使其接近零。然后,使用相同的参数对处理后的样本进行成像。
弃去已接种的培养板中全部七个孔中的完全培养基。然后,向阴性对照孔中加入一毫升预热的完全培养基,向其余六个孔中各加入一毫升预热的处理用培养基。将培养板置于37°C、5%二氧化碳的培养箱中孵育五小时。
弃去所有孔中的培养基后,用两毫升 PBS 轻轻洗涤细胞两次。移除 PBS,然后每孔加入 500 微升胰蛋白酶 EDTA 溶液。将培养板置于 37 摄氏度孵育,直至细胞脱落,大约需要 10 分钟。
用一毫升完全培养基中和每个孔中的胰蛋白酶,并轻轻振荡培养板。随后通过轻柔吹打重悬细胞。将细胞悬液分别转移至不同的FACS管中,在4摄氏度、150 × g条件下离心4分钟。
小心地弃去上清液。然后,向每根FACS管中加入500 µL预冷的PBS,轻轻重悬细胞。将FACS管置于冰上,待FACS分析。
本文展示了促性腺激素释放激素(GnRH)在咽癌细胞中的摄取分析。使用一微摩尔的荧光标记GnRH复合物处理细胞5小时后,可在咽癌细胞中观察到微弱但可辨别的绿色荧光信号,表明GnRH被轻微摄取。进一步增加复合物剂量可导致摄取增强,证明GnRH在咽癌细胞中的摄取具有剂量依赖性。
通过同时使用荧光标记的GnRH复合物处理,并对肺癌细胞中的一型GnRH受体及细胞核进行染色,分析了GnRH的受体依赖性摄取及其配体在受体中的细胞内分布。结果显示,一型GnRH受体定位于细胞膜,而GnRH蛋白则被细胞内化并保留在细胞质中。此外,还采用流式细胞术(FACS)分析研究了咽癌细胞对GnRH的摄取情况。
结果显示,当细胞处理的GnRH偶联物剂量从1微摩尔增加到10微摩尔时,GnRH的摄取显著增强。一旦掌握该技术,若操作得当,可在八小时内完成。在进行该实验步骤时,重要的是要记住避免将处理后的样品和荧光染料暴露于直射光线下。
完成此操作后,可进一步开展细胞活力或细胞凋亡检测等其他方法,以回答更多问题,例如靶向GnRH的药物抑制特定类型癌症生长的效率如何。该技术的建立为癌症治疗领域的研究人员探索基于GnRH的药物递送系统在黏附癌细胞中的有效性奠定了基础。观看本视频后,您应能够充分理解如何利用这些荧光标记的GnRH偶联物来研究癌细胞对GnRH靶向治疗的敏感性。
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本研究探讨了基于GnRH的药物递送系统在人癌细胞培养中的有效性。通过引入荧光标记的GnRH类似物以追踪细胞摄取过程,为靶向抗癌治疗提供了新的见解。
该方法可使生物制药研发团队在多种癌症模型中定量评估靶向促性腺激素释放激素(GnRH)的药物偶联物的细胞摄取效率。通过结合共聚焦显微镜与流式细胞术,该方法能够对基于GnRH的候选治疗药物进行机制性风险评估,实现对靶点结合的直接可视化及剂量依赖性定量分析。该策略可在先导化合物优化前,支持早期靶点验证,并提高对肿瘤选择性递送系统的预测可信度。
该方法适用于从靶点验证到先导物识别的整个发现过程,能够基于定量摄取和受体相关性对促性腺激素释放激素(GnRH)偶联候选物进行数据驱动的优先排序。