2018年4月16日
本文介绍了一种在小鼠中实现心脏特异性基因操作的实验方案。在麻醉条件下,通过第四肋间切口将小鼠心脏暴露于体外,随后使用注射器将编码特定基因的腺病毒注入心肌组织,接着通过蛋白质表达检测方法进行分析。 体内 成像和蛋白质印迹分析。
本实验的总体目标是通过向成年小鼠心肌内注射腺病毒,实现体内心脏特异性的基因操作。该方法有助于回答心血管研究领域中关于分子机制、心肌损伤修复以及基因治疗有效性的关键问题。该技术的主要优势在于无需进行呼吸机辅助,小鼠术后恢复迅速,且方法可重复、操作简便。
现在,让我们开始操作。在实验当天,将纯化的腺病毒载体溶液从零下80摄氏度取出,置于冰上融化。当腺病毒溶液完全解冻后,戴上口罩、无菌手术衣和无菌手套。
用75%乙醇喷洒腺病毒管。将病毒转移至无菌超净工作台,用50微升无菌Hamilton注射器吸取50微升病毒溶液。在注射器上安装30号针头。
将注射器置于直立位置。轻轻推动推杆,直至针尖处出现一滴溶液,以使病毒充满针尖。然后,小心吸取另外30 µL的腺病毒溶液至注射器中,并将注射器放置在冰上。
为了将腺病毒注射到小鼠心脏中,需通过夹捏脚趾无反应来确认动物已达到适当的麻醉水平,并在动物眼睛上涂抹眼膏。剃除动物胸部上部和腹部的毛发,并在暴露的皮肤上涂抹市售的脱毛膏。
一分钟后,使用湿纱布擦去药膏及残留的毛发。使用三种含碘氯己定的消毒剂对胸部左下侧进行消毒。然后,用手术巾覆盖动物,在手术区域对应位置剪开一小孔,并戴上一副新的无菌手套。
接下来,使用无菌技术和器械,从剑突至腋窝做一条0.5厘米的皮肤切口,并用镊子和微型蚊式止血钳钝性分离胸大肌和胸小肌。牵开胸大肌和胸小肌以暴露肋间间隙,然后使用微型蚊式止血钳穿刺并打开第四肋间间隙。
用非优势手的食指轻轻按压胸壁右侧,将心脏向切口方向移动。然后用同一只手的食指和拇指小心固定外置的心脏,用优势手向左心室的腹侧、背侧和侧壁心肌分别注射10 µL的腺病毒溶液。最后一次注射完成后,立即将心脏复位至胸腔内。
轻轻按压胸壁朝向切口位置,以手动排出胸膜腔内的空气。使用5-0丝线以水平褥式缝合法缝合皮肤,并将小鼠置于37°C加热垫上,在监测下直至完全恢复。随后,将使用过的Hamilton注射器及30号针头放入高温高压灭菌器中进行灭菌,并将灭菌后的针头丢弃至合适的锐器容器中。
腺病毒介导的荧光素酶心肌内注射后第5天,活体成像显示心脏部位荧光素酶显著过表达,该结果可通过Western blot分析证实,提示未发生非靶器官的转导。Western blot分析还显示维生素D受体表达显著增加。此外,注射编码维生素D受体腺病毒的小鼠左心室也表现出相应变化。
在注射了编码靶向维生素D受体RNA短发夹的腺病毒的动物中,该受体的表达明显降低。相比之下,在左心室注射的动物中,其右心室的维生素D受体表达未发生显著变化。一旦掌握,若操作得当,该方法可在两分钟内完成。
采用此方法后,还可进行其他技术,如心肌细胞注射,以回答更多科学问题,例如特定细胞疗法在心肌梗死中的有效性。
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本方案概述了一种通过心肌内注射腺病毒在成年小鼠中实现心脏特异性基因操作的方法。该技术具有恢复迅速、可重复性高的特点,适用于心血管研究。
该方法可实现小鼠心脏特异性的基因操作,有助于心血管药物研发中的靶点验证和作用机制去风险化。通过最大限度减少脱靶转导并实现快速恢复,该技术提高了临床前模型的预测可靠性。该技术与早期发现阶段的工作流程相契合,适用于需要可重复、可扩展且具有生理相关性的基因调控研究。
该方法适用于从靶点验证到临床前评估的发现全过程,可在先导化合物优化之前实现可靠的心脏基因调控。