2018年9月11日
在此,我们介绍一种建立 体内 利用细胞膜片技术构建的癌症模型。该模型可用于评估抗癌治疗药物。
您好,我是来自阿卜杜拉国王国际医学研究中心干细胞与再生医学科的Dr. Alaa Alshareeda。今天我们将通过细胞膜片技术,演示间充质干细胞对大鼠模型中肝细胞癌发展的影响。您好,我是Abdullah Almubarak。
我正在沙特国王大学的实验外科与动物实验室工作。我们使用裸鼠以避免细胞片移植后发生任何排斥反应。此图展示了在裸鼠上进行细胞片移植的步骤。
本研究将使用 8 至 12 周龄的裸鼠。首先,对裸鼠进行切口处理,使用手术刀在皮肤与下方肌肉之间做一个 7 至 10 厘米的切口,以暴露肝脏。为转移细胞膜片,使用无菌膜。
将膜置于细胞层上以收集细胞层。然后,将带有膜的细胞层放置于肝脏的一个叶上。细胞层构建。
在接种细胞前,使用未稀释的胎牛血清(FBS)包被3.5厘米温敏性UpCell培养皿。用FBS包被培养皿有助于细胞在膜层中的生长,并防止细胞降解。确保完全覆盖培养皿的所有表面。
将培养皿置于含5%二氧化碳和95%空气的湿润环境中,37摄氏度孵育24小时。次日,去除多余的胎牛血清(FBS),并将培养皿在室温下干燥至少一小时。将至少一百万个HepG2癌细胞单独或与间充质干细胞共培养接种至DMEM培养基中。
培养基中添加10% FBS和1%青霉素-链霉素。本研究中癌细胞与间充质干细胞的比例为4:1。加入细胞后,轻轻摇动培养皿。
将细胞置于含5%二氧化碳和95%空气的湿润环境中,37摄氏度培养。细胞片的脱离:当细胞融合度达到100%时,将培养皿从37摄氏度的培养箱中取出。
现在,将HepG2癌细胞片在室温下孵育1小时,同时将HepG2与间充质干细胞共培养物置于含5%二氧化碳和95%空气的湿润环境中,在20摄氏度下孵育30至40分钟。在细胞片脱离孵育期间,开始动物实验操作。所有动物研究均经沙特国王大学伦理委员会批准。
进行手术操作。通过测试足底回缩反射来检查麻醉深度。使用碘伏对手术区域进行消毒。
现在,用碘再次进行第二次擦洗。用无菌手术巾覆盖动物体表,以避免切口污染。使用无菌手术刀在皮肤与下方肌肉之间做一个长约7至10厘米的切口,以暴露肝脏。
用手术刀的钝背边缘将腹肌与皮肤分离。使用手术刀小心刺入白线,并用锐利的剪刀延长切口。将细胞片移植到大鼠肝脏上。
轻轻敲击培养皿底部,使细胞片从表面脱落。通过半圆形刮擦细胞片边缘,将细胞片与培养皿表面分离。然后,轻柔地将所有培养基从培养皿中移除。
确保膜片完整无损,否则无法使用。准备无菌膜以收获和转移细胞膜片。首先,用生理盐水浸润膜片,然后用无菌棉签去除多余的盐水。
将湿润的膜置于细胞层上方,注意避免膜与细胞层之间产生气泡。在膜和细胞层上滴加少量生理盐水,以收集材料。静置数秒,确保细胞层已牢固附着于膜上,然后进行收集。
现在,准备进行肝脏移植。确保肝脏表面干燥。将带有细胞片的膜覆盖在大鼠肝脏的单个叶上。
加入几滴无菌生理盐水,使细胞层从膜上脱落。等待五分钟,然后小心地移除膜。在此视频中,可见细胞层已附着在肝脏上。
最后,用五针尼龙缝线缝合深层肌肉和皮肤切口。缝合切口后,用碘伏对术区进行消毒。从停止麻醉到动物抬头的时间因个体而异,通常在5至20分钟之间。结果。
该图显示了移植 HepG2 细胞片一个月后大鼠肝脏上形成的肿瘤。此处的肿瘤是由 HepG2 癌细胞与骨髓间充质干细胞构建的细胞片移植后形成的。而该图显示的是由 HepG2 癌细胞与脐带间充质干细胞构建的细胞片移植后,大鼠肝脏上形成的最小肿瘤。该图显示了细胞片移植一个月后大鼠肝脏的 H 和 E 染色结果。
其中 A 代表正常大鼠肝细胞,B 显示癌变大鼠肝细胞。结论:通过观看本视频,您应能够利用细胞膜片技术在裸鼠上建立肝细胞癌模型。感谢观看。
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本文介绍了一种利用细胞膜片技术构建体内癌症模型的实验方案。该模型旨在有效评估抗癌治疗药物的效果。
细胞膜片技术可实现体内肝细胞癌(HCC)模型的可重复构建,有助于在肿瘤学研发管线中进行机制性降风险和靶点验证。将间充质干细胞(MSCs)整合到这些模型中,为研究肿瘤与基质间的相互作用及其对肿瘤生长的影响提供了平台。该方法可提高临床前候选药物评价的预测可靠性,并为基于风险评估的研发组合决策提供依据。
这种基于细胞膜片的肝细胞癌模型适用于从早期发现到临床前验证的连续研究过程,可在后期投入大量资源之前实现反复的假设检验和候选药物的风险评估。