2019年2月15日
本实验方案的目的是演示如何通过将拟南芥(Arabidopsis thaliana)幼苗的子叶浸入含糖培养基溶液中,诱导其子叶上形成簇生型气孔,并演示如何利用共聚焦激光显微镜观察簇生气孔保卫细胞中的叶绿体和微管等细胞内结构。
该方法回答了植物发育生物学中的一个关键问题:气孔的空间分布具有何种重要性?我们利用蔗糖溶液诱导拟南芥气孔簇集的系统操作简便,可直接应用于拟南芥的转基因株系或突变体株系。
首先,将1.1克Murashige-Skoog培养基盐和15克蔗糖加入烧杯中。向烧杯中加入490毫升蒸馏水,并用搅拌子混匀。使用氢氧化钾调节pH至5.8。
然后用500毫升蒸馏水稀释该溶液,并将稀释后的溶液转移至一个中等大小的瓶子中。接着对该溶液进行高压灭菌。根据文本中的实验方案制备灭菌溶液。
然后,在无菌条件下,将约50粒携带荧光标记的转基因拟南芥(A.thaliana)种子放入一个1.5毫升离心管中。接着向管中加入1毫升70%乙醇,通过倒置管子5次进行混匀。待种子沉降至管底后,用微量移液器小心吸除乙醇。
向种子中加入1毫升消毒液,倒置离心管5次以混匀。用微量移液器轻轻吸去种子中的消毒液,然后加入1毫升无菌水。
向24孔板的每个孔中加入1.5毫升MS(Murashige-Skoog)培养基溶液,然后向每个孔中放入两粒已灭菌的种子。使用两层封口膜,将盖子与板用胶带封好。
接下来,将培养板转移至培养箱中,孵育14天。首先,从24孔板中转移30微升MS(Murashige-Skoog)溶液至载玻片中央。使用解剖剪刀,从14天大的幼苗上切下子叶。
将子叶的观察面朝上漂浮在MS(Murashige-Skoog)培养基液滴中。按照《视觉化实验杂志》(Journal of Visualized Experiments)先前描述的方法制备子叶。将样品置于共聚焦激光显微镜的载物台上。
最后,使用明场照明选择成簇的保卫细胞进行观察。在本实验方案中,拟南芥(A.thaliana)幼苗中诱导产生了气孔成簇现象。在含蔗糖培养基中生长的成簇保卫细胞,其叶绿体比在无蔗糖条件下生长的保卫细胞更大。
通过叶绿体基质标记物和叶绿素自发荧光确认了叶绿体的增大,表明蔗糖处理导致叶绿体中淀粉粒的积累。此外,GFP tub-6 的共聚焦观察显示,在蔗糖处理的细胞中,皮层微管呈放射状排列,与无蔗糖处理的保卫细胞中的情况相同。实际上,我们是偶然发现这一方法的。
在发现之后,我们研究了成簇气孔的环境响应。我们相信,该系统有助于探究气孔分布的意义。
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本实验方案展示了如何利用含糖培养基在拟南芥(Arabidopsis thaliana)幼苗子叶中诱导簇状气孔的形成。同时,还描述了通过共聚焦激光扫描显微镜观察保卫细胞中叶绿体和微管等细胞内结构的方法。
了解气孔的空间分布有助于建立植物水分利用效率和光合作用能力的预测模型,这对于农业生物技术中作物产量优化和抗逆性提升具有重要意义。该诱导系统可在无需基因改造的情况下对保卫细胞生物学机制进行深入研究,支持植物信号通路中的靶点验证。该方法为在发现型研究流程中评估化合物对气孔模式形成及功能的影响提供了可扩展、可重复的实验平台。
该方法适用于早期发现阶段的工作流程,在此流程中,表型筛选和靶点验证先于先导化合物的鉴定,尤其适用于农药和植物性状开发管线。