2019年9月18日
我们介绍了一种体内方法,通过结合心脏毒素介导的骨骼肌损伤和自递送siRNA注射,研究卫星细胞中特定基因功能的丧失。
该技术可结合使用蛇毒心脏毒素的肌肉注射与自递送siRNA的肌肉注射,从而实现对骨骼肌再生过程的分析。应用自递送siRNA是一种研究单个基因在肌肉再生过程中功能缺失的巧妙方法,可避免使用转基因动物。在确认动物对足趾夹捏无反应后,剃除从膝关节至足掌的前肢下段注射区域的毛发,并清除所有松散的毛发。
将小鼠仰卧置于覆盖无菌手术布的头部垫上,使用70%乙醇消毒颅侧小腿的注射区域。随后,用胰岛素注射器(配备29号针头)吸取50 µL 20 µmol的肌毒素,将针头完全刺入膝盖远端的肌肉内。针头到位后,在10至20秒的给药时间内,边缓慢前后移动针头边沿肌肉全长注射肌毒素,以确保肌毒素均匀分布,从而损伤整块胫骨前肌。
然后将小鼠放回垫有加热垫的笼子中,并进行监测,直至其完全恢复仰卧状态。手术后第3天,按上述方法对注射区域进行消毒。按照上述方法,向麻醉小鼠的胫骨前肌注射不超过50 µL的针对目标基因的siRNA。
然后将小鼠放回笼中,并监测直至完全仰卧。在采集受损肌肉组织前,用铝箔包裹一支铅笔,并用胶带密封铅笔,使模具底部形成平整且封闭的表面。模具准备好后,用70%乙醇对整个动物体表进行消毒,并使用超锐利剪刀去除踝部皮肤。
在取材肌肉之前,用精细镊子夹住受伤腿踝部胫骨旁的筋膜处已闭合的镊子,向膝关节方向移动镊子以撕开筋膜,暴露胫骨前肌。为分离胫骨前肌,需先暴露其远端肌腱,并用精细镊子夹住该肌腱。使用弹簧剪剪断肌腱,然后在肌腱处夹住肌肉,将肌肉向膝关节方向牵拉。
为了便于分析肌腹区域,使用直剪刀在胫骨前肌的肌腹部位将其切成大小相等的两半,并用冷冻液将铅笔模具填充至一半。将胫骨前肌的两半组织垂直放入冷冻模具中,使肌腹区域朝向模具底部。用镊子将装有组织的冷冻模具半浸入液氮中。
当冷冻介质由透明变为白色并完全凝固后,将冷冻模具转移至-80摄氏度冰箱或干冰中,以备后续处理。在对照肌肉组织中,组织结构保持完整,表现为细胞核位于肌纤维周边,间质区域无单核细胞聚集。心脏毒素介导损伤7天后,出现新的肌纤维,其特征是细胞核位于中央,同时伴有单核细胞聚集,这些细胞主要为卫星细胞,也包括免疫细胞等非肌源性细胞。
在静息状态下,以红色标记的 Pax7 染色所示,卫星细胞位于绿色显示的基底膜下方。损伤后 3 天,卫星细胞数量增加,且卫星细胞不再位于基底膜下方。损伤后第 10 天,卫星细胞数量仍然增加。
为了进一步分析再生过程,可使用针对发育型肌球蛋白的抗体对新形成的肌纤维进行染色。在注射siRNA后两天,可检测卫星细胞中是否存在荧光标记的siRNA。在此项代表性实验中,再生肌肉中约75%的卫星细胞对荧光标记的siRNA呈阳性反应。
此外,约74%的再生肌纤维也对荧光标记的siRNA呈阳性,这表明要么是74%的再生肌纤维摄取了siRNA,要么是siRNA阳性的卫星细胞相互融合形成了新的肌纤维,或者与已存在的再生肌纤维发生了融合。最关键的步骤是实现胫骨前肌的完全损伤。除了组织学分析外,还可记录如肌肉产生的力量等参数,以功能性方式分析骨骼肌的再生情况。
本研究介绍了一种体内方法,通过心脏毒素介导的损伤和自递送siRNA注射,探索卫星细胞中特定基因功能的丧失。该技术可在无需转基因动物的情况下,促进对肌肉再生过程的分析。
在骨骼肌再生过程中对卫星细胞内的基因功能进行直接的活体研究,填补了肌肉修复治疗领域早期发现与靶点验证的关键空白。该方法无需依赖转基因模型,即可实现机制层面的风险评估与可预测性验证,从而加快项目筛选与靶点优先排序。该策略通过提供一种可扩展且具有生理相关性的功能基因组学系统,支持企业在再生医学领域的研发工作。
该方法通过在再生环境中实现基因功能分析,支持早期靶点验证和临床前模型开发,从而融入从发现到临床前研究的连续过程。