2020年7月18日
本文介绍了一种在小鼠脑内局部或全脑范围内瞬时开放血脑屏障(BBB)以递送荧光标记抗体并激活小胶质细胞的实验方案。同时介绍了一种通过组织学方法检测抗体递送效果及小胶质细胞激活状态的技术。
只有少量治疗性抗体能够被大脑吸收。通过我们的方法,可暂时性开放血脑屏障,从而将抗体递送至大脑。该技术使我们能够以非侵入性的方式将抗体递送至小鼠大脑。
使用细胞计数仪对微泡进行质量控制时,从混悬液振荡器中取出微泡溶液,并用19号针头刺穿微泡溶液小瓶的隔膜。使用配备19号针头的1毫升注射器,将100微升微泡稀释于5毫升过滤后的流动溶液中,再用移液器将100微升稀释后的微泡溶液加入含有10毫升过滤流动溶液的比色皿中。将比色皿固定在细胞计数仪的样品台上,并确保样品检测时使用30微米孔径的检测孔。
在软件中加载标准操作方法,选择编辑标准操作方法和浓度。输入稀释倍数为5,000倍,然后点击应用和确定。点击编辑信息以选择合适的文件名。选择预览,并确认微气泡样品浓度低于10%。选择开始和确定,以开始样品采集。
测量完成后,用过滤后的流动液冲洗细胞计数器的孔口。将稀释后的微泡溶液小瓶置于水浴中超声处理30秒。按照演示方法测量经超声处理的微泡溶液,并点击“编辑信息”以将该数据标记为空白样。
测量空白样品后,用初始读数减去最终读数,以排除非微气泡的颗粒。为使用荧光标记的抗小鼠 IgG 抗体对切片进行标记,按照制造商说明书,在室温下将 1 毫克小鼠 IgG 抗体与 Alexa Fluor 647 在 0.1 摩尔碳酸氢钠缓冲液中反应 15 分钟进行标记。孵育结束后,将荧光标记的抗体溶液加载至离心柱中,通过离心纯化抗体。
然后使用分光光度计测量蛋白质浓度。设置聚焦扫描超声系统时,在水囊中预留5毫米空间,以使超声焦点位于水囊底部下方9毫米处。向水囊中加入约300毫升脱气去离子水,并将环形阵列放入注满水的水囊中。
使用牙科镜检查表面是否存在气泡,然后启动应用程序软件。在波形菜单中,选择设置波形占空比,将脉冲重复频率设为 10 赫兹,占空比设为 10%,焦距设为 80 毫米,中心频率设为 1 兆赫兹,振幅设为 0.65 兆帕,机械指数设为 0.65。按下“设置”以定义波形,并将该波形存储在内存中。
选择治疗方案后,在运动控制器窗口中打开扫描选项卡,输入X方向运动的起始、停止和增量值,以及Y方向运动的起始、停止和增量值。为定义治疗位点的操作,请点击事件并打开脚本编辑窗口。选择将在每个治疗位点按所选顺序执行的操作列表,并将运动类型设置为光栅网格。
在事件选项卡中,选择添加动作,并将“同步移动”、“启动 ARB 触发器”、“等待”和“停止 ARB 触发器”动作移至脚本面板。然后点击等待动作,设置等待时间为 6,000 毫秒。为准备动物进行分析,在确认麻醉小鼠对脚趾夹捏无反应后,使用永久性标记笔标记头部中心位置,然后将塑料膜用胶粘在已剪去底部的小型称量皿底部,并在称量皿中填充超声耦合凝胶。
进行聚焦超声治疗时,将微泡试剂瓶倒置,根据小鼠每克体重取一微升溶液,轻柔地将其加入29号胰岛素注射器中。向注射器内加入100微升荧光标记的抗体,然后用拇指和食指轻轻滚动并倒置注射器,使抗体与微泡在注射器内充分混合。随后,小心缓慢地通过眶后静脉注射150微升微泡与抗体的混合溶液至小鼠体内,并设置计时器计时两分钟。
涂抹眼膏,然后将小鼠放入头部固定装置中,并将其鼻子固定在装置内。将装满超声耦合剂的小型称量皿置于小鼠头部上方,降低水袋,使其落在称量皿内的超声耦合剂上。随后使用操纵杆,通过视觉将换能器焦点对准小鼠头部中心。
当计时器响起后,在软件的运动选项卡中,选择重置原点并执行一次完整的扫描。治疗结束后,将眼用软膏涂抹于动物的眼睛,并将小鼠放入预热的恢复室中。此处展示了当微泡正确生成时,通过细胞计数仪测量所得的微泡大小和浓度的代表性结果。
通过红外扫描仪或对脑组织切片进行荧光显微镜观察,可轻松可视化抗体在全脑或组织切片中的摄取情况。如图中所示,通过小胶质细胞标志物的代表性染色,可用于判断给予抗体后小胶质细胞是否吞噬活性增强。在进行小鼠眼后注射及将换能器置于小鼠头部上方时,确保动物福利与安全尤为重要。
该方法可应用多种扫描模式,以靶向大脑的不同区域,如海马体、皮层或单侧脑半球。该技术可用于开发能够穿透血脑屏障的新疗法和药物,并用于研究血脑屏障的形成与开放机制。
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本研究介绍了一种在小鼠模型中短暂开放血脑屏障(BBB)的方法,以促进荧光标记抗体的递送并激活小胶质细胞。该方法可通过组织学技术实现抗体在脑内非侵入性的递送与摄取监测。
利用微泡的聚焦扫描超声(SUS)可实现血脑屏障的短暂开放,从而增强抗体向脑内的递送,解决了神经退行性疾病治疗中的一个关键限制。这种非侵入性方法通过允许对抗体的生物分布和细胞摄取进行定量评估,提高了靶点结合效率,并支持机制层面的风险降低。该方法通过在昂贵的临床前研究之前验证抗体候选物进入大脑的能力,为早期发现阶段提供了可预测的信心。
该方法通过实现对抗体进入大脑的早期验证,为先导化合物的筛选决策提供依据,并通过特定脑区的递送及小胶质细胞活性读数支持临床前研究的连续性,从而融入药物发现的全过程。