2022年4月1日
本文描述了一种重症急性胰腺炎的小鼠模型。本方案操作快速、简便且易于实施,因此可能为方便地研究急性胰腺炎的分子机制及不同治疗干预措施提供有效手段。
本视频的总体目标是通过逆行注射牛磺胆酸钠至胆胰管,建立急性胰腺炎的小鼠模型。所有涉及动物的实验均经苏州大学动物伦理委员会批准。所有外科手术均在全身麻醉下进行。
未使用镇痛药,以免干扰疾病的自然病程,此做法已有先前文献支持,并经苏州大学动物伦理委员会批准。术前将小鼠禁食8至12小时。通过0.22微米滤器制备5%牛磺胆酸钠溶液。
将手术器械和材料(包括镊子、剪刀、刀片架、持针器、止血夹、血管夹和无菌手术单)进行高压灭菌。微型注射器通过辐照灭菌。对小鼠腹腔注射1%戊巴比妥钠溶液,剂量为每公斤体重50毫克,以诱导全身麻醉。
用胶带将小鼠固定在辐照过的泡沫平板上,呈仰卧位。使用脱毛膏去除小鼠从剑突水平至双侧髂前上棘连线区域的毛发,左右两侧平行于腋前线。用0.5%碘伏擦拭皮肤两到三次,每次擦拭后静置干燥一到两分钟。
用无菌手术巾覆盖小鼠。切开皮肤层,然后皮下分离。沿腹部正中做长约2至3厘米的切口。
从胃部由左至右定位十二指肠。使用手术镊和浸有消毒剂的棉签轻轻将十二指肠拉出并移向左侧,以暴露胰腺、胆胰管和十二指肠乳头。用8-0缝线穿过十二指肠与胰腺在乳头周围的连接处,将缝线拉至小鼠身体左侧,以固定十二指肠。
轻轻牵拉皮肤和肝脏下缘。夹闭肝总管。将微量注射器逆向穿刺至远端胆胰管。
用钳子将针尖固定在十二指肠乳头附近。以每分钟 5 微升的速度向胆胰管内注入 10 微升 5% 牛磺胆酸钠溶液。保持胆胰管闭合 5 分钟,以维持稳定的压力。
移除夹钳。拔出显微注射器,取下另一个夹钳并固定缝线。将十二指肠恢复至原始解剖位置,并检查有无出血。
使用6-0缝线缝合伤口。移除无菌巾。用0.5%碘伏消毒切口。
将动物置于37摄氏度的加热垫上恢复麻醉。皮下注射0.8毫升0.9%生理盐水以补充液体。术后24小时,采用相同剂量和注射途径,用戊巴比妥钠对小鼠进行麻醉。
从腹主动脉采集全血,于1,500 × g离心15分钟,分离血清用于血清学检测。采集胰腺和肺组织用于组织学评估。将胰腺浸入4%多聚甲醛溶液中固定24小时。
用一系列浓度的酒精进行脱水,并用石蜡包埋。使用切片机制备5 µm厚的胰腺组织切片。进行苏木精-伊红(H&E)染色,以对胰腺进行组织学评估。
与术前相比,小鼠在术后24小时表现出轻微的活动减少并伴有体重下降。在术后72小时,对照组小鼠和SAP小鼠的存活率分别为100%和72.7%。根据胰腺组织切片的H&E染色结果,可在SAP小鼠中观察到胰腺组织的腺泡坏死,而在对照组小鼠中未发现明显改变。
此外,与对照组小鼠相比,SAP 小鼠中淀粉酶、脂肪酶、胰腺和肺组织髓过氧化物酶(MPO)活性显著升高。同时,肝肾功能指标包括丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)、血尿素氮(BUN)和肌酐水平也显著升高。通过逆行注射牛磺胆酸钠至胆胰管,可在小鼠中成功诱导重症急性胰腺炎。
充分暴露胆胰管以确保穿刺成功。穿刺过程中应注意保持适当的角度和力度,避免穿透胆胰管。本文所述的TC诱导SAP模型是研究重症急性胰腺炎发病机制的适宜模型。
该模型采用成本较低的试剂,具有经济性,且本视频有助于更快地培训新手外科医生。
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本文介绍了一种通过逆行注射牛磺胆酸钠来研究急性重症胰腺炎的快速且易于操作的小鼠模型。该模型可用于探究急性胰腺炎的分子机制及治疗干预措施。
建立可靠的重症急性胰腺炎临床前模型对于早期药物发现中的靶点验证和机制风险评估至关重要。这种逆行注射牛磺胆酸钠模型提供了一种可重复且经济高效的系统,可用于研究病理生理通路并评估潜在治疗药物。该模型的易操作性有助于支持高通量筛选的准备以及胰腺炎相关研发管线中的转化生物标志物匹配。
该模型通过在先导化合物识别阶段之前实现假设验证、通路解析和生物学风险降低,从而整合到早期发现工作流程中。