2025年10月31日
本实验方案描述了一种新型的慢性阻塞性胰腺炎建模方法,该方法通过可视化胰管并对其实施电凝,从而导致胰管阻塞。
建立慢性胰腺炎动物模型的方法有很多,包括腹腔注射钠盐以及胰管结扎法,但这些方法均存在一定的局限性。我们团队近期开发了一种新的小鼠慢性胰腺炎电凝模型,其优势在于无需长期给药或掌握复杂的技术,操作简便,可轻松建立慢性胰腺炎模型。
采用电凝法诱导小鼠慢性胰腺炎提供了一种更为便捷的实验模型,为该领域的未来研究提供了有前景的途径。首先,将麻醉后的小鼠置于加热垫上以维持体温。使用剃毛器剃除胸部至下腹部之间的毛发。
接下来,使用剪刀在腹部中央做一处两厘米长的切口,随后在上腹部与剑突之间做一处一厘米长的切口。使用腹腔扩张器定位胰腺区域以进行电凝。用无菌棉签从左上腹后方辨认十二指肠,并将其翻转以观察连接肝脏的胆管。
使用微血管夹暂时阻断近端胆总管,以防止液体反流入肝脏。将外径0.25毫米、内径0.35毫米的聚乙烯导管连接至0.25毫米的针头上,穿刺乳头周围区域,目标为十二指肠大乳头。将导管插入乳头并送入胆总管约一半长度后,停止继续插入。
启动输液泵,输注0.2%亚甲蓝溶液,直至胰管变为蓝色。输注完成后,拔出聚乙烯管并移除微血管夹。使用无菌棉签固定胰腺,并将电凝刀对准染成蓝色的区域。
设定电凝参数后,使用纯铜作为电极材料,在避开血管的情况下对胰腺进行2至3秒的处理。持续进行电凝,直至亚甲蓝染色区域变为黄色或棕色。当胰腺内不再可见蓝色染色液时,停止电凝操作。
手术后,将小鼠置于内衬垫料的聚乙烯盒中。胰管电凝后,对小鼠进行麻醉,并将其放置于手术平台上。通过眶后静脉丛采血时,轻轻牵拉背部皮肤,使眼球轻微突出。
然后,将毛细管的一端置于眼角处,以30至45度的角度轻轻插入眼球下方。旋转毛细管,直至血液开始流出。采血完成后,用纱布轻压眼睑使其闭合。
在1,200 ×g条件下离心血液15分钟,收集上清液至新离心管中。使用市售试剂盒按照生产商推荐的方法测定淀粉酶、胆红素和透明质酸的含量。随后,将已处死的小鼠置于设定为4°C的手术台上。
使用剪刀和镊子在腹壁上做 V 形切口,以暴露腹腔。取出胰腺并将其分为三部分用于染色。将胰腺固定于 4% 多聚甲醛溶液中,然后将固定的胰腺包埋于石蜡中以进行切片。
将石蜡块切成0.5毫米厚的切片,并使用苏木精-伊红染色以及马松染色进行免疫组织化学分析。在光学显微镜下观察染色后的胰腺组织。苏木精-伊红染色显示,在电凝组术后第14天可见散在的胰腺腺泡细胞以及慢性胰腺炎的证据。
第28天,观察到胰腺腺泡细胞的组织恢复及病理改变逆转的迹象。Masson染色显示,与假手术组相比,电凝组存在显著更多的纤维化。免疫组织化学染色显示,电凝组的I型胶原α1和α-平滑肌肌动蛋白水平升高,提示慢性胰腺炎程度更高。
电凝组的透明质酸水平升高,在第21天左右达到峰值,而假手术组则保持稳定。电凝组的胆红素水平在第14天显著上升,并在第21天左右达到峰值,而假手术组未见变化。电凝组的淀粉酶水平在第14天急剧升高,随后至第28天下降,而假手术组变化不大。
本方案介绍了一种通过胰管电凝固法在小鼠体内建立慢性阻塞性胰腺炎模型的新方法。与传统方法相比,该方法简化了诱导慢性胰腺炎的操作过程。
稳健的慢性胰腺炎临床前模型对于早期药物发现中的靶点验证和机制去风险化至关重要。基于电凝的鼠类模型为评估疾病机制和候选干预措施提供了一个可重复且操作便捷的平台。该模型克服了传统方法的关键局限性,有助于提升胰腺疾病研究项目中的预测可信度和转化连续性。
该电凝模型可整合到胰腺疾病研究及治疗评估的从发现到临床前的连续过程中。