2023年6月30日
本文描述了一种基于光密度的微孔板方法,用于量化噬菌体存在下细菌的长期生长情况,适用于放线菌及其他生长缓慢的细菌。该方法包含减少蒸发和盖子冷凝的改进措施,以及用于计算病毒感染指标的R代码,包括曲线下面积、最大生长量和相对毒力。
最终,我们的研究兴趣在于噬菌体与宿主的相互作用。本实验方案能够对生长缓慢的细菌中的噬菌体感染进行测量,并获得描述性感染参数。该方法在研究噬菌体与生长缓慢的放线菌之间宿主共进化过程中具有重要作用。
快速微孔板方法对生长迅速的细菌宿主效果极佳,但对于放线菌等生长较慢的细菌宿主,该方法持续时间过短,无法充分展示噬菌体感染的进程。我们的方法针对生长缓慢的细菌进行了优化,使细菌与噬菌体可共同培养多天,以充分表征噬菌体感染的动力学特征。本方案可在微孔板中评估噬菌体与生长缓慢细菌之间的相互作用,而无需从较大的培养瓶中进行分段取样。
本方案使用 readily available 的材料,适用于延长培养时间,并可在单个微孔板中接种多个重复样本。首先,将六毫升 lid coating 溶液加入无菌 96 孔微孔板盖的内表面,操作时握住盖子边缘。旋转盖子以确保溶液完全覆盖内表面。
将溶液静置20秒后倒出。将盖子倾斜倒置在已灭菌的纸巾上,干燥35至45分钟。将融化的琼脂糖冷却至50至60摄氏度。
然后将100微升0.1%琼脂糖溶液移液至板孔之间的空隙中。再将200微升琼脂糖移液至位于A行、H行、第1列、第2列、第11列和第12列的孔中。取一块先前准备好的含有防雾溶液和琼脂糖的微孔板。
将75微升细菌加入第3至第10列中。接着,在第3和第4列的孔中各加入75微升无菌噬菌体缓冲液,作为无噬菌体的阳性对照。每次加入后,通过上下吹打混匀溶液,然后向各列中加入不同浓度的75微升噬菌体,并在每次加入后再次通过上下吹打混匀每种溶液。
使用 0.5 英寸标签纸将培养板的两个短边粘合,以部分封闭培养板同时允许气体交换。将培养板置于微量板摇床上孵育,并使用微量板读数仪测量光密度。然后根据光密度测量结果,绘制对照组和感染组的生长曲线。
生长曲线显示了噬菌体的有效感染,表现为加入噬菌体的孔中细菌吸光度随时间降低;如果细菌不在噬菌体的宿主范围内,则不会观察到细菌密度的下降。
本研究提出了一种基于光密度的新型微孔板方法,用于定量检测在存在噬菌体的情况下长期细菌生长,特别适用于放线菌等生长缓慢的细菌。该方案解决了在这些细菌宿主中测量噬菌体感染动态的难题,能够实现长时间共培养,并有助于深入分析感染相关指标。
量化噬菌体在生长缓慢的放线菌中的感染动态,对于理解宿主-病原体相互作用以及降低抗菌药物研发早期发现阶段的风险至关重要。本改进的基于光密度的微孔板检测方法可在较长时间内实现对感染指标的高通量、可重复测量,有助于提升靶点验证和机制研究的预测可靠性。该方案具有可扩展性和定量输出的特点,可作为评估整个研发管线中噬菌体-细菌系统的可重复利用工具。
该检测方法通过在生长缓慢的细菌模型中实现假设验证、通路解析和感染指标的定量,融入了从发现到临床前研究的连续过程。