2024年5月3日
本实验方案旨在通过免疫染色评估生物功能化自组装肽在细胞黏附、类器官形态及基因表达方面的作用。我们将使用结直肠癌细胞系,以提供一种经济高效的方法来获取用于高强度检测的类器官。
本研究旨在评估超短自组装肽作为结直肠癌类器官培养基质的应用。我们探讨了类器官形态与存活率、增殖能力、黏附特性以及生物功能化影响相关的问题。目标是优化肽基质的组成,以实现有效的类器官生长,并为再生医学做出贡献。
本领域的前沿技术包括用于精确有机制造的3D生物打印、用于动态培养环境的微流控平台,以及原子力显微镜和多光子显微镜等先进成像工具。CRISPR-Cas9基因编辑技术可实现精准的遗传修饰,而单细胞RNA测序则提供深入的分子层面洞察。当前的实验挑战主要包括提高类器官的可重复性、优化大尺寸结构的血管化,以及模拟复杂的组织架构。
克服长期培养中的这些局限性,并将免疫组分整合到模型中,是当前活跃的研究方向。建立标准化操作流程以及解决伦理问题,仍是该领域持续面临的挑战。本领域的重要发现包括证实超短自组装肽适用于类器官培养。
我们已展示了这些多肽的多功能性、可重复性和稳定性,为微环境的精细调控提供了一个平台。这有助于推动基于类器官的研究、再生医学以及生物功能化水凝胶研究的发展。本实验方案通过提供一种系统性方法来评估超短自组装多肽基质中的类器官,填补了该领域的研究空白。
该方法针对在这些基质中评估细胞行为所需的标准方法,有助于合理设计基于肽的水凝胶以实现类器官的最佳生长,并推动再生医学研究。首先,将20微升(10 µL)的2倍浓度肽溶液滴加到24孔板各孔的中央。孵育后,向每孔加入10微升(10 µL)的2倍浓度磷酸盐缓冲液(PBS)。
用移液枪枪头轻轻混合溶液。让凝胶液滴稳定至少20分钟,确保液滴保持完整。接着,将2.5毫升0.0125%胰蛋白酶-EDTA加入含有两百万个SW1222人结直肠腺癌细胞的培养瓶中。
将细胞在37摄氏度下与胰蛋白酶孵育5至10分钟,直至其从培养瓶上脱落。加入5毫升完全培养基以灭活胰蛋白酶。然后使用30微米细胞筛过滤细胞悬液。
使用10微升微量移液器,向每个肽液滴中加入2微升细胞悬液。将SW1222细胞系的800个细胞接种至每个孔中,培养四天。在37摄氏度、5%二氧化碳条件下孵育液滴30分钟。
然后向每个孔中加入 0.5 毫升的完全培养基。制备对照时,用完全培养基稀释基底膜基质对照储备液。将细胞悬液加入稀释后的基底膜溶液中。
用移液器将20微升稀释的基底膜基质加入含细胞的每个孔中。在37摄氏度下孵育细胞20分钟。待液滴凝固后,加入0.5毫升完全培养基。
在第1天、第4天和第7天使用明场显微镜对细胞进行成像,以评估类器官的生长情况。细胞培养一周后的明场成像显示,小的细胞簇正在组装形成类器官。在多肽水凝胶中培养的SW1222来源类器官呈圆形形态,外观较亮。
颜色较深的外观表明密度过高,这是不理想的,如第七天肽 P 中菌落所见。首先,将 20 µL 肽水凝胶液滴移入 24 孔板中。将 SW1222 细胞系的 800 个细胞接种至每个孔中,培养四天。
第4天,用移液器吸出培养基。用PBS洗涤每个孔两次。然后向孔中加入400微升4%甲醛溶液。
孵育完成后,使用 P-1000 移液器吸头吸除甲醛溶液。随后用 PBS 再洗涤一次孔板。将细胞在 1 毫升破膜缓冲液中于室温孵育 30 分钟。
吸出缓冲液并用 PBS 洗涤孔板后,加入 0.5 毫升封闭缓冲液。随后去除封闭缓冲液,再用 PBS 洗涤孔板。然后向孔板中加入 200 微升稀释后的一抗溶液。
将培养板在4°C下孵育过夜。使用P-200移液枪头吸除溶液,然后用PBS溶液洗涤各孔。
接下来,按1:40的比例将鬼笔环肽偶联物加入已稀释的二抗小管中。用移液器将此混合液加入到板的各孔中。然后在避光条件下于室温孵育三小时。
吸出溶液并用 PBS 洗涤孔板后,每孔加入 300 微升 DAPI 溶液。孵育后,吸出溶液,再次用 PBS 洗涤孔板。将孔板置于 4 摄氏度保存,最长可保存 7 天。
免疫染色显示,在非生物功能化肽P、生物功能化肽P1和Matrigel中发现的类器官均定位于顶膜和基底外侧膜。非生物功能化肽P可诱导基底外侧膜处的细胞间连接表达。首先,使用10倍物镜的落射荧光显微镜对SW1222来源的类器官染色样本进行成像。
仅使用 RHOD 和 DAPI 通道。启动 ImageJ 软件,依次点击 Plugin(插件)、Macros(宏),然后运行来自 CellPose GitHub 网站的 imagej_roi_converter.py 文件。
当窗口出现时,从结肠类器官文件夹中选择第一个文件,然后单击“打开”。接着选择与该文件对应的 seg.npy 文件,然后单击“打开”。
接下来,在 ROI 管理器窗口中点击“全选”,然后点击“测量”。随后在结果窗口中依次点击“文件”→“另存为”,以保存结果。对文件夹中结肠类器官管腔的同一图像重复上述图像转换操作。
然后加载 OriginPro 软件。点击“数据”(Data),接着选择“导入文件”(Import File)以找到导入向导。选择与同一图像对应的类器官和管腔形状特征的两个 CSV 文件。
将管腔形状的属性复制到菌落结果列中,以将每个管腔测量值与其对应的菌落配对。在新列中,将管腔面积除以菌落面积,得到相应菌落的相对管腔面积。选择对应于每个菌落圆形度的列以及管腔面积的列。
然后依次点击“绘图”、“基础2D图”和“散点图”。右键单击绘图窗口,选择“绘图细节”。点击“质心图”选项卡,选中“显示子集的质心点”、“连接至数据点”和“显示椭圆”选项。
在二维培养的细胞中,克隆的圆形度表现出很高的变异性。在Matrigel中培养的细胞,其管腔相对大小的分布更为广泛。
本研究评估了超短自组装肽作为结直肠癌类器官培养基质的应用。研究重点包括类器官的形态、活性、增殖能力以及生物功能化的影响。
采用超短自组装肽基质对结直肠癌类器官进行标准化制备与定量表征,满足了肿瘤学早期发现领域对可重复、可调控的三维模型的关键需求。该平台可系统评估细胞-基质相互作用,提升在疾病相关体系中预测结果的可信度,并促进生物功能性水凝胶的理性设计。该方法增强了从发现生物学向临床前模型开发的转化连续性,直接影响项目筛选与机制层面的风险降低。
该方法通过实现标准化的三维类器官制备、定量成像以及数据驱动的基质优化,融入了从发现到临床前研究的连续过程。