1. Oktober 2007
Mein Name ist Dave Edington. Ich bin Assistenzprofessor an der Fakultät für Bioingenieurwesen der University of Illinois in Chicago. Unser Hauptarbeitsgebiet ist die Anwendung mikrotechnologischer Verfahren auf biomedizinische Anwendungen, insbesondere unter Einsatz mikrofluidischer Vorrichtungen.
Und heute zeigen wir Ihnen eines unserer Projekte, bei dem ein mikrofluidisches Gerät verwendet wird, das an eine standardmäßige Perfusionskammer für Gehirnschnitte angepasst ist, um räumlich und zeitlich gezielte Stimulation eines Gehirnschnitts durchzuführen. Derzeit erfolgt in elektrophysiologischen Schnittpräparationen die Applikation von Neurotransmittern entweder global über den gesamten Gehirnschnitt – also die gleichzeitige Stimulation des gesamten Gehirnschnitts – oder mittels einer Mikropipette, mit der zu verschiedenen Zeitpunkten Neurotransmitter lokal zugeführt werden.
Die Gehirnscheibe ist eine sehr komplexe Struktur, und wenn man Neurotransmitter global appliziert oder eine Mikropipette verwendet, können in vivo-artige Stimulationsmuster nicht reproduziert werden. Mit unserer Plattform hingegen können wir die Stimulation gezielt auf sehr spezifische Bereiche der Gehirnscheibe beschränken und eine in vivo ähnlichere Stimulation erzielen. Hier sind aktuelle Perfusionsysteme dargestellt, die mit einem Standard-Deckglasobjektträger andocken.
Und diese ermöglichen es, dass das Medium über den gesamten Schnitt hinweg perfundiert wird. Allerdings können Sie die räumliche Auflösung des Neurotransmitters, den Sie mit Ihrem Stimulationsgerät verwenden, nicht gezielt steuern. Daher haben wir ein mikrofluidisches Gerät entwickelt, das mit dieser standardmäßigen Perfusionskammer verbunden werden kann.
So können alle gängigen elektrophysiologischen Assays verwendet werden. Der einzige Unterschied besteht darin, dass anstelle eines Glas-Deckglases mit Glasboden ein A-P-D-M-S-Gerät zum Einsatz kommt, das mehrere Durchgangslöcher aufweist, die mit mikrofluidischen Kanälen verbunden sind. Diese Kanäle führen zu Öffnungen in der oberen Perfusionskammer, sodass Neurotransmitter durch diese Löcher, entlang der Kanäle, durch die Durchkontaktierungen und in das Gehirnschnittpräparat hinein appliziert werden können. Zur Flüssigkeitszufuhr verwenden wir eine Technik, die als passives Pumpen bezeichnet wird.
Daher benötigen wir keine komplexen Schläuche, die aus diesem Gerät herausführen, da die Elektrophysiologie bereits ein sehr komplexes Verfahren ist. Durch die Vereinfachung des Gerätedesigns und die Verwendung einer passiven Pumpe wird der experimentelle Protokollablauf bei der Anwendung dieses mikrofluidischen Geräts vereinfacht. Die Struktur des Geräts ist ein zweischichtiges mikrofluidisches Netzwerk.
Die erste Schicht besteht aus den Leitkanälen, die mit den Auslassöffnungen verbunden sind, und die zweite Schicht umfasst diese Durchgangslöcher, die diese Kanäle mit der Vertiefung verbinden. Die Herstellung erfolgt mithilfe standardmäßiger zweischichtiger U-Mikrofertigungsschritte, bei denen einige Ausrichtungsmarkierungen sicherstellen, dass diese Durchkontaktierungen genau mittig in diesen vier Kanälen positioniert sind. Dieses Gerät ist so konzipiert, dass es mit der standardmäßigen Perfusionskammer verbunden werden kann, sodass alle gleichen elektrophysiologischen Assays verwendet werden können.
Wir können dies also an eine Elektrophysiologie-Apparatur anschließen, unser Objektiv in die Vorrichtung einführen, lokale Stimulation über unsere mikrofluidischen Kanäle bereitstellen und den experimentellen Aufbau nicht unnötig komplizierter gestalten, als es erforderlich ist. Indem wir das Gerätedesign so einfach wie möglich halten, können wir diese Plattform viel leichter verbreiten. Unsere derzeitige Struktur weist vier Vs in der Mitte unserer mikrofluidischen Kanäle auf, doch diese kann an die Anforderungen unterschiedlicher Labore angepasst werden, je nachdem, welchen Bereich des Gehirns sie untersuchen.
So könnte die eine Region das Hippocampus und die andere die äußere Großhirnrinde untersuchen. Wir könnten diese Regionen je nach Gestaltung des mikrofluidischen Geräts gezielt stimulieren. Da das Gerät keine externen Komponenten zur Funktion benötigt, genügt ein Mikropipettierer, um mit der passiven Pumptechnik auf diese Öffnungen zu pipettieren.
Das Standard-Elektrophysiologie-Labor muss keine weiteren Geräte zusätzlich zu diesem unteren Substrat anschaffen, um dieses Gerät verwenden zu können. Bisher haben wir uns in dem Projekt darauf konzentriert, die mikrofluidischen Kanäle mit den standardmäßigen Perfusionskammern zu verbinden. Der nächste Schritt des Projekts besteht nun darin, dieses Gerät in echter hypothesenbasierter Forschung mit diesen Schnittpräparationen zu testen.
Und so haben wir gezeigt, dass wir durch die Verwendung fluoreszierender Farbstoffe verschiedene Bereiche räumlich stimulieren können, indem wir diese fluoreszierenden Analoga in die Kanäle injizieren. Der nächste Schritt besteht nun darin, tatsächlich biologische Experimente durchzuführen. Das Fachgebiet der Mikrofluidik befindet sich somit an einem Übergangspunkt.
Wir bewegen uns fort von neuartigen Machbarkeitsnachweisen und nutzen diese Geräte nun tatsächlich, um zuvor unmögliche, neue und spannende Entdeckungen zu machen. Das Feld entwickelt sich also hinweg von Techniken, bei denen wir auf mikroskaligen Prinzipien wie schneller Diffusion, laminarer Strömung, hohen Oberflächen-zu-Volumen-Verhältnissen und Prozessintegration basierten. Nun werden wir diese Prinzipien nutzen und anwenden, um unerfüllte Anforderungen im Labor und in der Klinik zu adressieren.
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In diesem Artikel wird die Anwendung von mikrofluidischen Vorrichtungen in der Neurowissenschaft behandelt, insbesondere für die räumlich-zeitliche Stimulation von Gehirnschnitten. Die Methode verbessert die Präzision der Neurotransmitterapplikation im Vergleich zu herkömmlichen Techniken.
Diese Integration der Mikrofluidik mit der Elektrophysiologie adressiert ein zentrales, bisher unerfülltes Bedürfnis in der Neurowissenschaftsforschung: die räumlich und zeitlich kontrollierte Zufuhr von Neuromodulatoren zu Gehirnschnitten. Indem sie regionspezifische Stimulationsmuster ermöglicht, die in-vivo-Bedingungen besser nachahmen, verbessert die Plattform das Vorhersagevertrauen bei der Zielvalidierung und die mechanistische Entlastung von Risiken in Programmen zur Wirkstoffforschung für das zentrale Nervensystem. Das vereinfachte, passiv gepumpte Design unterstützt eine breite Anwendung in verschiedenen elektrophysiologischen Arbeitsabläufen, ohne dass spezielle Infrastruktur erforderlich ist.
Die Methode integriert sich in den Entdeckungsprozess von der frühen Target-Validierung bis zur präklinischen Bewertung und ermöglicht räumlich aufgelöste mechanistische Untersuchungen, die das Vertrauen in die Auswahl von ZNS-Targets und die Optimierung von Leitverbindungen erhöhen.