Bestimmung Boden übertragenen Wurminfektionen Status und körperliche Fitness der School-Aged Children

Das Ziel der folgenden Methoden besteht darin, Versuche zur Beurteilung des so übertragenen Helmuth-Infektionsstatus sowie der Auswirkungen solcher übertragener Helmuth-Infektionen auf die körperliche Fitness von Schulkindern zu erleichtern und zu standardisieren. Dies wird durch die Anwendung der Kato-Katz-Technik zur Diagnose von Infektionen mit häufigen, durch den Boden übertragenen Helmminthen erreicht, insbesondere mit Ascaris Lumoid TUS Tria sowie den Hakenwürmern und CLIs stoma Duo Denali und NTO ERUs. Als zweiter Schritt wird die Erman-Technik durchgeführt, die am häufigsten angewandte Methode zur Diagnose von Strully Stir Corrales.

Danach wird, um die körperliche Fitness von Kindern zu beurteilen, der 20-Meter-Shuttle-Run-Test durchgeführt. Es werden Ergebnisse erzielt, die die Unterschiede in den körperlichen Fitnessniveaus zwischen mit Helmut infizierten und nicht infizierten Kindern auf der Grundlage der oben genannten Methoden aufzeigen. Eine Kombination dieser Methoden kann helfen, zentrale Fragen zu beantworten, beispielsweise, ob über die Sojabohne übertragene Helmintheninfektionen einen Einfluss auf die körperliche Fitness infizierter Personen haben, und welche tatsächliche Belastung solche Infektionen darstellen.

Die Cato-Catz-Methode wird angewendet, um den Nachweis von Parasiteneiern zu erleichtern, die infizierte Personen mit ihrem Stuhl ausscheiden. Legen Sie dazu zunächst eine Standard-Cato-CATT-Schablone in die Mitte eines Objektträgers. Die Schablone weist in der Mitte eine Öffnung auf, die 41,7 Milligramm Stuhl aufnimmt; tragen Sie dabei Handschuhe.

Entnehmen Sie zwei bis drei Gramm einer frischen Stuhlprobe und geben Sie sie auf ein Stück Zeitungspapier oder Aluminiumfolie. Drücken Sie dann ein Draht- oder Kunststoffsieb auf den Kot, um die Probe zu sieben. Mit einem kleinen Kunstspatel wird das gesiebte Material vom Sieb abgeschabt und vollständig in das Loch der Cato-Kat-Schablone eingefüllt.

Glätten Sie den Inhalt der Aussparung mit dem Spatel, um überschüssiges Fäkalmaterial zu entfernen. Entfernen Sie anschließend die Schablone vertikal, ohne das Fäkalmaterial zu stören, das nun auf dem Objektträger haftet. Die Schablone und der Spatel können nach Reinigung mit Seife und Wasser wiederverwendet werden.

Als Nächstes wird ein Stück Cellophan, das mindestens 24 Stunden lang in Glycerin-Malachitgrün-Lösung eingeweicht wurde, über die Fäkalprobe auf dem Objektträger gelegt. Um die Fäkalien zu einem dicken Abstrich zu verteilen, wird vorsichtig ein sauberer Objektträger gegen den Objektträger mit der Fäkalprobe gedrückt und das Material gleichmäßig innerhalb eines Kreises verteilt, dessen Durchmesser etwas kleiner ist als die Breite des Objektträgers. Danach wird der Objektträger vor direktem Sonnenlicht geschützt und 30 bis 60 Minuten lang zum Klären belassen.

Nach 30 bis 60 Minuten das Objektträger präparat entnehmen und den Dickschichtpräparat systematisch am Lichtmikroskop mit 40- bis 100-facher Vergrößerung untersuchen. Die Anzahl der Eier zählen und nach Art differenzieren. Anschließend die Eieranzahl mit 24 multiplizieren, um eine standardisierte Infektionsrate zu erhalten, die üblicherweise als Anzahl der Eier pro Gramm Stuhl oder EPG angegeben wird.

Um die Erman-Methode durchzuführen, richten Sie zunächst einen Stativhalter ein, der einen Glastrichter tragen kann. Nehmen Sie den Glastrichter und befestigen Sie ein Stück Gummischlauch an dessen Stiel. Verschließen Sie den Schlauch mit einer Klemme oder einer Federklammer und stützen Sie anschließend den Trichter auf dem Stativ ab.

Platzieren Sie anschließend ein Sieb oder ein kegelförmiges Stück Drahtgitter in dem Trichter. Bedecken Sie dieses Gitter mit einem Stück medizinischer Mullbinde. Füllen Sie dann den Trichter mit Leitungswasser und stellen Sie sicher, dass die Vorrichtung dicht ist, während Sie Handschuhe tragen.

20 bis 30 Gramm frischen Stuhl in die Mitte der medizinischen Mullbinde geben und sicherstellen, dass er vollständig unter Wasser eingetaucht ist; gegebenenfalls mehr Wasser hinzufügen. Anschließend die medizinische Mullbinde über die Probe falten. Danach zwei Stunden lang künstliches Licht von unten auf den Trichter richten.

Das liegt daran, dass die Erman-Technik nach dem Prinzip funktioniert, dass die Corrales-Larven lichttaktisch reagieren und sich deshalb aus einer beleuchteten Fäcalprobe herausbewegen. Nach zwei Stunden öffnen Sie vorsichtig die Klemme in dem Gummischlauch und lassen 50 Milliliter des untersten Wasseranteils im Trichter in ein Zentrifugenröhrchen ablaufen. Danach zentrifugieren Sie das gesammelte Wasser fünf Minuten lang mit 600 × g.

Danach vorsichtig den Überstand abgießen, ohne das Sediment zu stören. Die letzten Tropfen im Gefäß belassen, die Probe erneut suspendieren und zwei Tropfen der Lösung auf einen Objektträger pipettieren. Den Objektträger zunächst unter dem Lichtmikroskop mit 40-facher Vergrößerung zur Parasitendetektion untersuchen und anschließend mit 100- bis 400-facher Vergrößerung zur Bestätigung der Art.

Erste Stadiumslarven von OID stires sind lebendig und bewegen sich aktiv unter dem Mikroskop, um den Shuttle-Run-Test vorzubereiten. Messen Sie zunächst eine flache, gerade Laufstrecke von 20 Metern ab und markieren Sie die Distanz mit Hütchen. Legen Sie einen Herzfrequenzmesser am Handgelenk des Testteilnehmers an und den entsprechenden Sender um die Brust des Teilnehmers.

Diese Ausrüstung misst die Herzfrequenz vor und nach dem Test und überwacht somit, ob die Versuchsperson maximale Anstrengung aufgebracht hat. Nachdem die Monitore befestigt wurden, wird das Kind angewiesen, auf der Bahn hin und her zu laufen, wobei es dem Rhythmus voraufgezeichneter akustischer Signale folgen soll, die 20-Meter-Runden entsprechen, beginnend mit einer Lauftempo von 8,5 Kilometern pro Stunde. Die Frequenz der Signale, die 20-Meter-Intervalle markieren, erhöht sich automatisch jede Minute um 0,5 Kilometer pro Stunde, um sicherzustellen, dass die Versuchsperson jeweils eine neue 20-Meter-Runde beginnt.

Jedes Mal, wenn das Signal ertönt und endet, bevor das nächste Signal eintrifft. Stoppen Sie das Kind, falls es in zwei aufeinanderfolgenden 20-Meter-Intervallen nicht dem vorgegebenen Tempo folgt. Danach notieren Sie die Laufgeschwindigkeit für das letzte Intervall.

Der Teilnehmer absolvierte den Test vollständig, zusammen mit dem Alter, dem Geschlecht des Teilnehmers und der erreichten Herzfrequenz. Am Ende des Tests sicherstellen, dass diese Herzfrequenz die maximale Herzfrequenz des Kindes ist. Wird die maximale Herzfrequenz nicht erreicht, hat das Kind möglicherweise keine maximale Anstrengung unternommen, und der Test sollte wiederholt werden.

Schätzen Sie nun die maximale aerobe Kapazität oder VO₂ max des Teilnehmers anhand der folgenden Gleichung. VO₂ max entspricht 31,025 plus 3,238 mal der Laufradgeschwindigkeit in Kilometern pro Stunde minus 3,248 mal dem Alter in Jahren plus 0,1536 mal der Laufradgeschwindigkeit in Kilometern pro Stunde mal dem Alter in Jahren. Die folgenden beiden Abbildungen zeigen die Eier eines seltenen Lumoiden, die etwa 45 bis 74 Mikron lang und 35 bis 50 Mikron breit sind und dicke Schalenwände aufweisen, hier dargestellt als befruchtetes Lumoid-Ei.

Beachten Sie das Erscheinungsbild der Alta-Albumin-Schicht, die eine goldbraune Färbung verleiht. Im Gegensatz dazu ist hier ein nicht befruchtetes Lumoid-Ei dargestellt. Beachten Sie das Fehlen der äußeren Schicht sowie, dass das Ei leicht verlängert und größer als das befruchtete Ei ist.

Insgesamt zeigt dieses Bild die Eier des Tee-Trico. Sie sind etwa 50 Mikrometer lang und 22 Mikrometer breit, länglich geformt und weisen deutliche Polstopfen auf. Im Gegensatz dazu haben die hier dargestellten Hakenwurmeier eine sehr dünne Wand und einen klaren Ring um einen dichten Zellhaufen im Zentrum des Eies.

S stir Corrales L ein Larven werden in diesem Bild gezeigt. Sie sind etwa 180 bis 380 Mikrometer lang und weisen einen sehr kurzen bukkalen Hohlraum auf. Ein deutliches Genitalanlage kann beobachtet werden und wird durch den blauen Pfeil hervorgehoben.

Der rote Pfeil zeigt das Schwanzende der Larven, das eine scharfe Spitze aufweist. Der 20-Meter-Shuttle-Run-Test wurde durchgeführt, um die körperliche Fitness zu messen. Die Interpretation der Shuttle-Run-Testergebnisse kann auf verschiedene Weisen erfolgen.

Die körperliche Fitness von Kindern kann zwischen infizierten und nicht infizierten Probanden verglichen werden, die hinsichtlich Alter und Geschlecht sowie weiterer möglicherweise relevanter Gesundheitszustände, sozioökonomischem Status und kultureller Gewohnheiten ähnlich sind. Man kann zudem versuchen, einen möglichen Dosis-Wirkungs-Zusammenhang zwischen der Intensität der STH-Infektionen und der körperlichen Fitness zu identifizieren sowie unterschiedliche Grade der Multi-Parasitismus-Belastung mit der körperlichen Fitness zu vergleichen. Als Beispiel zeigt der hier dargestellte Graph, dass die körperliche Fitness bei Kindern, die mit T Tri Coria infiziert waren, signifikant niedriger war als bei Kindern, die nicht mit T Tri Coia infiziert waren.

Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man die Cut-Cuts-Technik, die Blankpräparationstechnik und den 20-Meter-Shuttle-Lauf-Test durchführt. Diese Methoden helfen dabei einzuschätzen, ob Infektionen mit dem Soja-Transmitter-Helm Auswirkungen auf die körperliche Fitness von schulalterlichen Kindern haben.