1 de abril de 2011
Este protocolo describe un método para la medición en tiempo real de los flujos de calcio mitocondrial de imagen fluorescente. El método se aprovecha de una circular permutaciones YFP basada en sensor de calcio de doble excitación radiométrica (radiométrica pericam-mt) expresa selectivamente en las mitocondrias.
El objetivo general de este procedimiento es monitorear los cambios en la concentración de calcio mitocondrial en células vivas. Esto se logra primero transfectando las células con la proteína indicadora de calcio peram métrico de razón, dirigida a la matriz mitocondrial, uno o dos días después de la transfección. El microscopio de fluorescencia y el software se configuran para la obtención de imágenes en células vivas.
Posteriormente, se adquieren imágenes de células expresando el peramétrico de razón tras la adición de un agonista movilizador del calcio. El paso final del procedimiento es el análisis cuantitativo de las imágenes adquiridas. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestren cambios dinámicos en la concentración mitocondrial de calcio mediante microscopía de fluorescencia de células vivas que expresan una proteína indicadora de calcio con relación métrica.
La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes, como la medición de los niveles de calcio mediante indicadores sintéticos de calcio, es que el peram métrico está codificado genéticamente y, por lo tanto, puede dirigirse a las mitocondrias o a cualquier otro orgánulo de interés. Hola, soy el Dr. Ascar, investigador posdoctoral en el laboratorio del Dr. Benning, y hoy demostraré el procedimiento. Para comenzar el protocolo, siembre células HeLa la noche anterior a la transfección sobre cubreobjetos de vidrio estériles colocados en una placa de cultivo estándar de seis pocillos, a una densidad que al día siguiente será aproximadamente del 70 % de confluencia para la transfección. Al día siguiente, prepare complejos de ADN con Lipofectamina 2000 según las instrucciones del fabricante, utilizando cuatro microgramos del vector de expresión mitocondrial de peram métrico y 10 microlitros de Lipofectamina 2000 diluidos en 0.5 mililitros de Opti-MEM para cada pocillo a transfectar.
A continuación, sustituya el medio de cultivo D-M-E-M-F-B-S HELOC en cada pocillo con 1,5 mililitros del mismo medio sin antibióticos. Añada la solución LIPECTOMY a la solución de ADN y mezcle suavemente después de que se hayan formado los complejos. Añada la solución de ADN Lipectomy gota a gota a cada pocillo que se va a transfectar, mezclando mediante un suave movimiento de balanceo de la placa, e incube durante cuatro horas en un incubador de cultivo celular a 37 grados Celsius, 5 % de dióxido de carbono, tras la incubación.
Sustituya el medio por D-M-E-M-F-B-S que contenga antibióticos. Deje que las células expresen metric peram durante uno o dos días antes de la adquisición de imágenes utilizando pinzas. Coloque suavemente un cubreobjetos con células HELOC en una cámara de imagenación adecuada con solución de imagenación.
Coloque la cámara de imagen en el portaobjetos de un microscopio invertido. A continuación, utilice un objetivo de inmersión en aceite de 40 x o superior y una longitud de onda de 380 nanómetros. Para encontrar un área de interés que contenga una o más células que expresen peram métrico, se utiliza aquí 380 nanómetros para identificar las células como métricas.
Peram es menos resistente al fotoblanqueo a esta longitud de onda. Una vez identificada un área de interés, configure el software para excitación dual a 495 y 380 nanómetros. A continuación, adquiera imágenes secuencialmente excitando alternativamente a 495 y 380 nanómetros.
Adquiera imágenes de los niveles basales de calcio durante al menos 30 segundos antes de la aplicación del agonista. Luego, aplique el agonista movilizador de calcio mediante un aparato de perfusión, anotando el momento de adición; los tiempos de exposición al agonista y los intervalos de adquisición deben optimizarse para prevenir el fotoblanqueo, al tiempo que permiten una resolución temporal suficiente. Una vez finalizado el experimento, las imágenes pueden analizarse fuera de línea.
Para comenzar el análisis, seleccione una región de interés dentro de un área vacía del campo para restar la fluorescencia de fondo si es necesario. A continuación, exporte las mediciones de la relación 4 95 3 80 de la región de interés a Excel o a un software gráfico similar. Este panel de imágenes muestra la localización subcelular del peram métrico de relación y las mitocondrias.
A la izquierda se muestra una imagen de células vivas de células HeLa que expresan peramétrico de razón. En el centro, la tinción fluorescente de las mitocondrias con el colorante selectivo MitoTracker Red CMXRos. Finalmente, a la derecha, la imagen fusionada que se muestra aquí es una serie de imágenes de razón en pseudocolor de 495 y 380 nanómetros de cuatro células HeLa que expresan peramétrico de razón en las mitocondrias, tratadas con 10 micromolar de ATP; y la cuantificación de los cambios en los niveles mitocondriales de calcio de esas cuatro células previas se muestra aquí en esta imagen de una célula HeLa que expresa peramétrico de razón en las mitocondrias.
La heterogeneidad de la respuesta de calcio en mitocondrias individuales, así como una fragmentación mitocondrial significativa, es evidente a los 60 minutos de tratamiento con 0,5 micromolar de estorsporina. Algunas mitocondrias presentan aumentos oscilatorios de calcio, indicados con la flecha blanca, mientras que otras no muestran cambios significativos en los niveles de calcio, indicados con una flecha amarilla. Este gráfico revela el cambio en los niveles mitocondriales globales de calcio en una sola célula HELO tras la inducción de apoptosis durante 120 minutos con 0,5 micromolar de estorsporina.
Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo medir los cambios dinámicos en los niveles de calcio mitocondrial en respuesta a diversos tli utilizando la proteína mediadora de calcio R geometric peram, que se dirige selectivamente a la matriz mitocondrial.
Este protocolo describe un método para la medición en tiempo real de los flujos de calcio mitocondrial mediante un indicador de calcio codificado genéticamente, el pericam-ratiométrico-mt. Esta técnica permite el monitoreo dinámico de los niveles de calcio en células vivas, proporcionando información sobre la función mitocondrial.
El monitoreo de la dinámica del calcio mitocondrial proporciona información mecanicista esencial sobre las vías de apoptosis, permitiendo la validación de dianas en los mecanismos de muerte celular. Este enfoque con sensores codificados genéticamente respalda la confianza predictiva en modelos preclínicos al cuantificar flujos de calcio específicos de orgánulos con resolución temporal. El método facilita la reducción temprana de riesgos en hipótesis terapéuticas que involucran disfunción mitocondrial en modelos de enfermedad.
El método se integra en el continuo de descubrimiento, desde la validación del blanco hasta la reducción del riesgo mecanicista y la evaluación preclínica, al proporcionar datos dinámicos y cuantificables sobre la función mitocondrial.