11 de julio de 2011
Se describe un nuevo método para aumentar el rendimiento de cDNA a partir de una sola célula cantidades de ARNm en las reacciones de laboratorio estándar de lo contrario la transcripción inversa. La novedad reside en el uso de un micromixer, que utiliza el fenómeno de las microcorrientes acústica, para mezclar líquidos a escalas microlitro con más eficacia que temblores, agitación o trituración.
Este procedimiento aumenta los rendimientos de ADN a partir de cantidades de ARNm de una sola célula. Comience por equilibrar el mezclador micro en un incubador ajustado a la temperatura deseada para la reacción de transcripción inversa. Luego, prepare reacciones estándar de RT en el laboratorio, que contengan cantidades de ARN de una sola célula en volúmenes de microlitros.
Coloque el tubo de reacción firmemente en los orificios de mezclado, seleccione los parámetros adecuados de mezclado y encienda el micromezclador. En última instancia, este procedimiento puede utilizarse para obtener mayores rendimientos de ADNc mediante PCR cuantitativa como preparación para la reacción de RT. Equilibre el micromezclador en un incubador a 37 grados Celsius durante al menos una hora.
En tubos PCR estériles estándar sin nucleasas, de pared delgada y 200 microlitros. Prepare las reacciones de transcriptasa inversa según las instrucciones del proveedor, excepto que utilice cantidades equivalentes a una sola célula de ARN total de entrada. Ahora seleccione la frecuencia y amplitud adecuadas para la mezcla micrométrica.
A continuación, coloque el tubo firmemente en el mezclador micrométrico. Luego encienda el mezclador micro. Permita que la reacción transcurra durante 60 minutos; al finalizar, apague el mezclador micro y transfiera las reacciones al hielo para su uso inmediato en aplicaciones posteriores. En comparación con otros métodos, la ventaja principal de la mezcla micrométrica en el contexto de las reacciones de RT es el rendimiento de ADN.
En este análisis de reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa, las trazas de QPCR utilizando cebadores diseñados para detectar ADNc que representa ARNm de neuro uno ilustran los efectos de la mezcla con Microm durante los primeros cinco minutos o durante los 60 minutos completos, en comparación con la duración de la reacción de RT inmediatamente anterior a la incubación de RT. La mezcla con Microm durante los primeros cinco minutos no produjo una mejora significativa respecto a la agitación. Sin embargo, la mezcla con Microm durante los 60 minutos completos produjo una mejora significativa del rendimiento equivalente a 15 ciclos de QPCR.
Además, el análisis de la curva de fusión de la PCR cuantitativa demuestra que la mezcla micro durante los 60 minutos completos de la reacción previa R dos produce una señal consistente en muestras duplicadas, como se muestra en las trazas rojas. Esto contrasta con las trazas variables observadas con mezcla micro durante los primeros cinco minutos, como se muestra en azul, o con agitación únicamente, como se muestra en trazas grises negras que corresponden a controles sin plantilla.
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Este artículo presenta un método novedoso para aumentar el rendimiento de ADNc a partir de ARNm de una sola célula utilizando un micromezclador. La técnica aprovecha la microcorriente acústica para mejorar la mezcla de fluidos en reacciones estándar de transcripción inversa.
Mejorar el rendimiento de ADNc a partir de ARNm de una sola célula aborda un cuello de botella crítico en los flujos de trabajo de validación de objetivos y cribado fenotípico. Al permitir analizar más genes por célula con precisión cuantitativa, este método mejora la confianza predictiva en las decisiones iniciales de descubrimiento. El enfoque favorece la reducción de riesgos en hipótesis terapéuticas mediante lecturas moleculares reproducibles y escalables a partir de muestras biológicas limitadas.
El método se enmarca dentro del continuo de descubrimiento temprano, apoyando específicamente la transición desde la generación de hipótesis sobre dianas hasta la identificación de compuestos activos, al mejorar la calidad y cantidad de los insumos moleculares para cribados funcionales.