11 juillet 2011
Nous décrivons une nouvelle méthode pour augmenter le rendement d'ADNc de cellule unique quantités d'ARNm dans les réactions de laboratoire standard de transcription inverse contraire. La nouveauté réside dans l'utilisation d'un micromélangeur, qui utilise le phénomène de la microstreaming acoustique, de mélanger les liquides à l'échelle du microlitre plus efficacement que secouer, vortex ou trituration.
Cette procédure augmente les rendements d'ADNc à partir de quantités d'ARNm provenant d'une seule cellule. Commencez par équilibrer le micro-mélangeur à l'intérieur d'un incubateur réglé à la température souhaitée pour la réaction de transcription inverse. Préparez ensuite des réactions standards de RT en laboratoire, comprenant des quantités d'ARN provenant d'une seule cellule, en volumes microlitriques.
Placer fermement le tube à réaction dans les orifices de mélange, sélectionner les paramètres de mélange appropriés, puis mettre en marche le micromélangeur. En fin de compte, cette procédure peut être utilisée pour obtenir des rendements accrus d'ADNc par PCR quantitative en vue de la préparation de la réaction de RT. Équilibrer le micromélangeur dans un incubateur à 37 degrés Celsius pendant au moins une heure.
Dans des tubes PCR stériles standards sans nucléase de 200 microlitres à paroi fine. Préparez les réactions de transcriptase inverse conformément aux instructions du fournisseur, sauf qu'il faut utiliser des quantités d'ARN total équivalentes à une seule cellule. Sélectionnez maintenant la fréquence et l'amplitude appropriées du mélange micrométrique.
Placez ensuite le tube fermement dans le micromélangeur. Ensuite, allumez le micromélangeur. Laissez la réaction se dérouler pendant 60 minutes ; une fois terminée, éteignez le micromélangeur et transférez les réactions sur de la glace pour une utilisation immédiate dans des applications en aval ultérieures. Par rapport à d'autres méthodes, l'avantage principal du micromélange dans le contexte des réactions de transcription inverse est le rendement en ADN.
Dans cette analyse par réaction de polymérase en chaîne quantitative, les tracés de PCRq obtenus à l’aide d’amorces conçues pour détecter l’ADNc représentant l’ARNm de neuro une illustrent les effets du mélange microm pendant les cinq premières minutes ou les 60 minutes complètes, comparés à la durée de la réaction de RT immédiatement avant l’incubation de RT. Le mélange microm pendant les cinq premières minutes n’a pas entraîné d’amélioration significative par rapport à l’agitation. Toutefois, le mélange microm pendant les 60 minutes complètes a produit une amélioration significative du rendement, équivalente à 15 cycles de PCRq.
En outre, l'analyse de la courbe de fusion de la QPCR démontre que le mélange micro pour les 60 minutes complètes de la réaction précédente R deux produit un signal cohérent dans les échantillons en double, comme indiqué par les tracés rouges. Ceci contraste avec les tracés variables observés avec un mélange micro pendant les cinq premières minutes, comme indiqué en bleu, ou avec l'agitation uniquement, comme indiqué par les tracés gris-noir qui correspondent à des témoins sans matrice.
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Cet article présente une méthode novatrice pour augmenter le rendement d'ADN complémentaire à partir d'ARNm de cellule unique en utilisant un micromélangeur. La technique exploite le microcourant acoustique pour améliorer le mélange des fluides dans des réactions standard de transcription inverse.
Améliorer le rendement en ADNc à partir de l'ARNm de cellules uniques permet de surmonter un goulot d'étranglement critique dans les flux de travail de validation ciblée et de criblage phénotypique. En permettant d'analyser un plus grand nombre de gènes par cellule avec une précision quantitative, cette méthode renforce la fiabilité prédictive des décisions prises en phase initiale de découverte. L'approche contribue à réduire les risques associés aux hypothèses thérapeutiques grâce à des lectures moléculaires reproductibles et évolutives issues d'échantillons biologiques limités.
La méthode s'inscrit dans la phase précoce de la découverte, en soutenant spécifiquement la transition de la génération d'hypothèses sur la cible à l'identification de composés candidats, en améliorant la qualité et la quantité des entrées moléculaires destinées au criblage fonctionnel.