26 בנובמבר 2010
גרורות הריאה ניסיוניים מודל CTL עכבר חיסוני לניתוח האינטראקציה תאים סרטניים תא-T In vivo.
המטרה הכוללת של פרוצדורה זו היא לבחון את היעילות של אימונותרפיה באמצעות העברה אדופטיבית של תאי T ספציפיים לגידול in vivo. דבר זה מושג תחילה על ידי השתלת תאי גידול באמצעות הזרקה לווריד הזנב הצדי בעכברים, במטרה להקים גרורות בריאות. השלב השני של הפרוצדורה הוא טיפול בעכברים הנושאים את הגידול באמצעות לימפוציטים T ציטוטוקסיים CTLs ספציפיים לגידול.
השלב הסופי הוא שימוש בדיו הודו (India ink) כאמצעי לוויזואליזציה וככימות של קשרי גידול. בסופו של דבר, ניתן להפיק תוצאות המראות את ה-CIE של טיפולים שונים באמצעות מדידת גודל הגידול וכימות מספר קשרי הגידול. שלום, שמי מרי צימרמן ואני חברה במעבדתו של ד"ר קווין לו (Dr. Kevin Lu) במכללה לרפואה של ג'ורג'יה (Medical College of Georgia).
שלום, שמי Shelene Hu. אני סטודנטית בשנה השנייה ואני עובדת גם במעבדה של Dr. Lou. היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות מסורתיות, כגון עקומות הישרדות, הוא שההליך הנוכחי הוא איכותני וכמותי כאחד. להשלכות של הטכניקות הללו עשוי להיות השפעה על טיפולים בסרטן, כיוון שהן מדמות אימונותרפיה אדופטיבית של תאי T בחולי סרטן בבני אדם.
נתחיל בתהליך. ביום שלפני הזרקת תאי הגומלה, זרעו בבליל T75 אחד עד 1×10⁷ תאי CMS-4met ב-10 מיליליטר של מצע RPMI המכיל 10% סרום. כדי לקבל תאי גומלה הצומחים במהירות, דגרו אותם למשך הלילה בטמפרטורה של 37°C ביום ההזרקה.
הסיר את המצע ושטוף את התאים פעם אחת עם PBS, לאחר מכן קצור את תאי הגידול באמצעות 0.05%trypsin EDTA בטמפרטורה של 37 degrees Celsius למשך חמש דקות. עצור את התגובה עם 10 milliliters של מצע RPMI המכיל 10%serum. העבר את התאים למבחנה קונית.
סובב את התאים במהירות של 1300 RPM בצנטריפוגה מסוג val legend RT למשך שלוש דקות. בטמפרטורת החדר, הסר את העלייה (snat), השהה מחדש את התאים ב-10 milliliters של one XHB Ss טרי לשטיפה. לאחר מכן, סובב שוב והשהה מחדש באותו אופן.
ספרו את תאי הגידול באמצעות hemo.Cytometer. דללו את התאים ב-HBSS כך שניתן יהיה להשעות את כמות התאים הדרושה לכל הזרקה. בנפח כולל של 100 microliters, חממו את עכברי ה-B SEA בני שש עד שמונה שבועות בתוך כלי זכוכית טבול במים חמים.
כדי להרחיב את וריד הזנב, מקמו את העכבר במכשיר קיבוע לווריד הזנב על המדף. השתמשו במזרק מיקרו כדי להזריק 100 µL של תאי גידול לווריד הזנב הלטרלי. השתמשו בטכניקה סטרילית כדי למנוע זיהום לאחר ההזרקה.
הפעילו לחץ קל על אתר ההזרקה עד להפסקת הדימום. החזירו את העכבר לכלוב ואפשרו לגידול לגדול לשלב הרצוי. ביום ההעברה, בצעו פיפטור מעלה ומטה כדי להשעות מחדש לימפוציטים T ציטוטוקסיים מוצמדים (purified cytotoxic T lymphocytes או CTLs) שהוכנו.
כפי שמתואר בטקסט, העבירו את כל התאים מתוך צלחת אחת לשפופרת קונית בנפח 15 מיליליטר, תוך הקפדה שהנפח לא יעלה על שני שלישים מהשפופרת. הכניסו פסטור פפיפט סטרילית לשפופרת הקונית והוסיפו בשכבה מתווך להפרדת לימפוציטים או LSM מתחת לתאים, עד שהנפח הכולל יתקרב ל-14 מיליליטר.
הקפידו לא להפריע לשכבות. סבבו בצנטריפוגה במהירות של 2000 RPM למשך 20 דקות בטמפרטורת החדר. אין להשתמש בבלם כדי להאט את הרוטור לאחר הסבב, העבירו את ה-CTLs לפרוקת קונית חדשה של 15 מיליליטר.
הוסיפו HBSS לנפח של כ-10 מיליליטר. לשטיפה. ספרו את התאים, סובבו במערך צנטריפוגה במהירות של 1300 RPM למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר, וסספנדו מחדש ב-HBSS לצפיפות התאים הנדרשת להזרקות.
שמרו על נפח כולל של 100 microliters לכל הזרקה. השתמשו בטכניקת ההזרקה לזנב כפי שהודגמה קודם לכן בסרטון זה. כדי להזריק את ה-CTLs לעכברים עם גידולים, החזירו את העכבר לכלוב ואפשרו ל-CTLs להקיף את הגידול ולפעול עליו.
עכברים נשחטים בדרך כלל לצורך אנליזה 14 עד 21 ימים לאחר הטיפול ב-CTL. כדי להדמיץ גרורות בריאות, הנח עכבר נשחט על גבו על לוח קלקר. הצמד את הרגליים בעזרת סיכות כדי להבטיח גישה ללא הפרעה לקנה הנשימה.
רססו את הצד הגחוני ב-70% ethanol, החל מאמצע הבטן. השתמשו במספריים כדי לגזור לאורך קו האמצע דרך כלוב הצלעות וכלפי מעלה לכיוון בלוטות הרוק. חשפו את הקנה (trachea).
השתמשו בפינצטה כדי להסיר רקמות הסובבות את הקנה. השחילו קצה של פפפיה של 200 microliter מתחת לקנה תוך כדי החזקת הקצה ביד אחת. הרימו בעדינות את הקנה למעלה והרחיקו אותו מהגוף.
סובב את הפלטפורמה ב-180 מעלות. השתמש במזרק של 50 milliliter כדי להזריק דיו הודים לתוך הריאות דרך הקנה. נפח את הריאות לחלוטין בעזרת הדיו עד שתרגיש התנגדות חזקה.
השתמשו במספריים כדי לחתוך את הקנה. החליקו פינצטה מתחת לריאות והרימו אותן מתוך העכבר. שטפו את הריאות קצרה בביקר של ליטר מים בתוך מנדף כימי.
העבירו את הריאות למכל זכוכית המכיל חמישה מיליליטרים של תמיסת FTI. רקמת הגידול תופיע כקשריות לבנות על הריאות השחורות. לאחר מספר דקות, ניתן לספור את הגידולים ולהשאים בתמיסת FTI ללא הגבלת זמן.
ריאות של עכברים שהוחדרו בתאי קרצינומה של הגומלה. שורת תאים 4T1 מראה נקודות לבנות המעידות על גידולים. עכברים שהוחדרו ב-IRF8 בעל השפעה דומיננטית שלילית K79E מראים פוטנציאל מטאסטטי מוגבר של תאי הגידול.
תמונות אלו מציגות אנליזה היסטולוגית של יעילות אימונותרפיה באמצעות העברה אדופטיבית של CTL. בעכברים עם גידולים שהוזרק להם תמיס סלין, נראו מספר גידולים שישה ימים מאוחר יותר, כפי שמסומן בחצים. לעומת זאת, בעכברים שהוזרקו להם תאי T ספציפיים לגידול, נראתה הפחתה במספר הגידולים באותו ניסוי.
טיפול בדיו סין (India ink) מספק דרך פשוטה יותר למדידת היעילות של העברה מאמצת של תאי CTL. כאן, הפקעות הגידול הלבנות בריאות הנושאות גידולים מבדילות אותן בבירור מריאות שעברו בהצלחה העברה מאמצת של תאי CTL, וספירת הפקעות מאפשרת רמה של כימות שאינה אפשרית בבדיקה היסטולוגית. בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור לחמם את העכברים כדי להקל ולהבטיח הזרקות מדויקות יותר לווריד הזנב.
לאחר צפייה בסרטון זה, צריכה להיות לכם הבנה טובה לגבי האופן שבו ניתן להעריך את יעילות הטיפול באמצעות הליך פשוט זה לכימות גודל ומספר הגוממאים. תודה שצפיתם ובהצלחה בניסוייכם.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מציג מודל ניסויי לניתוח אינטראקציות בין תאי גידול לתאי T in vivo, תוך התמקדות בגרורות ריאה ובאימונותרפיה. הפרוצדורה כוללת השתלה של תאי גידול לעכברים וטיפול בהם באמצעות לימפוציטים T ציטוטוקסיים (CTLs) כדי להעריך את יעילות הטיפול.
מודל זה מאפשר הערכה פרה-קלינית של אימונותרפיה באמצעות העברה אדופטיבית של תאי T, על ידי כימות עומס הגריעות בריאות in vivo. הוא תומך בתיקוף המטרה ובהפחתת סיכונים מכניסטיים על ידי קישור פעילות CTL להפחתה במספר קשרי הגומלין של הגידול. הבדיקה מספקת ביטחון חיזוי עבור מועמדים לאימונותרפיה לפני אופטימיזציה של המולקולות המובילות.
המודל משתלב ברצף הגילוי, החל מתיקוף המטרה ועד לזיהוי מוביל (lead identification), ומספק מערכת בעלת יכולת גרורות לסריקת אימונותרפיה.