15 בנובמבר 2012
hemocytes חרקים למלא תפקידים חשובים רבים, הוא חיסון ושאינם מחוסנים, לאורך כל שלבי התפתחות חרקים. הידע הנוכחי שלנו של הסוגים והתפקוד hemocyte מגיע ממחקרים על מודלים גנטיים של חרקים. כאן, אנו מציגים שיטה לחילוץ, כימות והמחשת hemocytes מזחלים פרא.
המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא להפיק, לדמיין ולספור המוציטים (hemocytes) מזחלי פרפרים פראיים. הדבר מושג תחילה על ידי הרדמת הזחל באמצעות הנחתו על קרח, הזרקת תמיסת בופר המכילה נוגד קרישה, והחזרת הזחל אל הקרח כדי לאפשר להמוציטים לחזור למחזור הדם לפני ההפקה. השלב השני הוא ביצוע חתך רדוד בקצה האחורי של הזחל באמצעות סקאלפל נקי.
בשלב הבא, לוחצים בעדינות על הזחל באמצעות פינצטה רכה. לאחר מכן, שואבים את תערובת תמיסת הבאפר וההמולימפה באמצעות מיקרו-פיפט ומעבירים אותה למבחנה של מיקרו-צנטריפוגה. השלב האחרון הוא ערבוב עדין של תמיסת ההמולימפה עם נפח שווה של תמיסת באפר, והעברה של 10 µL מהתמיסה להמוציטומטר לצורך ויזואליזציה וספירה של מספר ההמוציטים.
בסופו של דבר, ניתן להשתמש בשיטה זו להוצאת המוציטים כשיטה מהירה ויעילה לספירתB המוציטים ממיני זחלי שַׁפְשּׁוּף שונים, וככלי לבחינת היבטים פיזיולוגיים של התגובה החיסונית התאית של החרקים. היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שניתן להשתמש בה כדי להוציא המולימפה מזחלים עם רגליים מצומצמות מאוד. דגמי זחלים אחרים מוממים על ידי חיתוך של אחת הרגליים, תוך הוצאת המוציטים מהנוזל שיוצא.
בנוסף, ניתן להשתמש בטכניקה זו כדי להוציא המולימפה ממיני חרקים אחרים. שיטה זו יכולה לשמש למענה על שאלות מפתח בתחום האימונולוגיה האקולוגית, כגון כיצד התגובה החיסונית התאית של החרק משתנה בהתאם לאיכות התזונה, לשלב ההתפתחות או לחשיפה לפתוגנים שונים. כדי להתחיל בהליך זה, הרדימו את הזחלים בשלב השלת לפני האחרון על ידי קירורם על קרח למשך 20 דקות לפני הוצאת התאי ההמולימיים.
לאחר מכן, הכניסו את הקצה התמים של מחט קפילרית נקייה בקוטר 16 gauge לתוך הפחית המחוברת למזרק זכוכית של 20 מיליליטר. השאירו את הפחית המכילה את תמיסתו האיסוף פתוחה על שולחן המעבדה. מלאו באיטיות את הקפילרה בכ-10 עד 15 µL של בופר.
לאחר מכן, הניחו את המחט על כדור חימר הממוקם לצד מיקרוסקופ הדיססקציה. הניחו את הזחל בצלחת פטרי. יש למקם את החרק על צדו כך שהספרואידים יהיו גלויים בבירור.
בזמן הצפייה תחת מיקרוסקופ סטריאו, החזיקו את הזחל במקומו באמצעות פינצטה והניחו את המחט קרוב לאחד מהפלחים הכדוריים, שם קוטיקולה של החרק רכה בדרך כלל. לאחר מכן, לחצו בעדינות את מחט הנימילית כנגד גופו של החרק. ברגע שהמחט חדרה דרך הקוטיקולה, מזריקו את מלוא נפח התמיסה אל תוך הזחל.
גוף הזחל יתנפח בעקבות ההזרקה, אך הוא לא אמור להתבקע או לה mengeluarkan נוזלים. החזיר את הזחל לצ그러ת המקורה בקרח. מקם את החרק על גבו כדי למנוע דליפה של הבאפר מהפצע.
חזור על ההזרקות עבור כל זחל ששימש לחילוץ הלימפה ההמוlynetic. לאחר מכן, השאר את כל החרקים להתקרר על קרח למשך 30 דקות. כעת, הנח את הזחל בתוך צלחת פטרי תחת מיקרוסקופ הדיסקציה.
בצעו בזהירות חתך רדוד באורך של כשני עד שלושה מילימטרים באזור האחורי של הזחל, באמצעות סכין מנתחים (scalpel) סטרילית, מבלי לפגוע במעי או באיברים פנימיים אחרים. לאחר מכן, לחצו בעדינות על הזחל באמצעות פינצטה פלסטית גמישה, תוך איסוף של כ-10 עד 20 µL של תערובת ההמולימף באמצעות טיפ של פיפטה בנפח 10 µL. שוב, היזהרו לא לפגוע ברקמות הפנימיות.
לאחר מכן, השליכו את שאריות הזחלים. אספו את ה-hemo limp מכל זחל למבחנות מיקרו-צנטריפוגה נפרדות, מסומנות ומסליקוניות, בנפח של 0.5 milliliter. לאחר מכן, הוסיפו בערך 10 עד 20 microliters של תמיסת הדגירה לכל דגימת hemo limp שנאספה מזחל בודד.
שמור את דגימות ההמולימפה על קרח בכל עת בשלב זה. ערבב את דגימת ההמולימפה ואת תמיסת האינקובציה מיד לפני ספירת ה-hemocytes.
טיפול זה מאפשר הפרדה תקינה של ההמוציטים ומונע התגבשות. השתמשו בקצה פפית נקי כדי להעביר 10 µL של דגימת המולימפה מעורבבת עם תמיסת האינקובציה אל המוציטומטר. לאחר מכן, באמצעות מיקרוסקופ פועל (compound microscope), ספרו ורשמו את מספר ההמוציטים בלפחות 15 מהריבועים הגדולים של הסריג המרכזי של ההמוציטומטר.
חברו ערכים אלו כדי לקבל סכום כולל של מספר ההמוציטים ב-15 הריבועים. לאחר מכן, שטפו ביסודיות את ההמוציטומטר ואת זכוכית הכיסוי שלו באמצעות בקבוק שטיפה עם מים מזוקקים ודה-יוניים. לאחר מכן, נגבו אותם עד לייבוש בעזרת נייר סופג מסוג Kim wipes.
חזרו על הפרוצדורות עבור שאר דגימות ה-hemo limp וחשבו את מספר ה-he cytes הממוצע למיליליטר של נפח hemo limp עבור כל זחל. תמונת מיקרוסקופיית השדה המואר (brightfield microscopy) מציגה he cytes שחולצו מזחלי nucle hin ai בהגדלה של 20 x. בעקבות פרוצדורה זו, ניתן להשתמש ב-he cytes שנאספו כדי לחקור את התגובה החיסונית התאית ולהקים בדיקות כגון פגוציטוזה (phagocytosis), cap, encapsulation ופעילות pH oxidase.
בנוסף, ניתן לאסוף R-N-A-D-N-A וחלבונים שלא נוצלו עבור בדיקות נוספות, במטרה לחקור תגובות חיסוניות תאיות אלו בחרקים. לאחר צפייה בסרטון זה, תהיו בעלי הבנה טובה לגבי אופן ההזרקה לזרזיים לצורך הפקת המולימפה, וכיצד לאסוף המולימפה המכילה המוציטים חיים.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג שיטה למיצוי, כימות והדמיה של המוציטים מדודקים בטבע. להמוציטים תפקידים מכריעים הן בתפקודים חיסוניים והן בתפקודים שאינם חיסוניים לאורך התפתחות החרק.
מיצוי וכימות מהימנים של המוציטים (hemocytes) מזחלי פרא מאפשרים את חקר מנגנוני החסינות המולדת במיני חרקים שאינם מיני מודל, ובכך תומכים בתיקוף יעדים בשלבים מוקדמים של אימונולוגיית חרקים. פרוטוקול זה מספק זרימת עבודה סטנדרטית לבידוד תאי מערכת החיסון, ובכך מקל על ביצוע מחקרים השוואתיים ובדיקות תפקודיות הרלוואנטיות למחקר תרגומי ולאקו-אימונולוגיה. השיטה מגבירה את הביטחון בניבוי מאפייני התגובה החיסונית, ומספקת בסיס לקבלת החלטות מותאמות סיכון במסלולי גילוי המערבים מודלים של חרקים.
פרוטוקול מיצוי ההמוציטים הזה מתאים לממשק שבין השלב המוקדם של הגילוי לפיתוח הבדיקה, ומאפשר מחקרים של תאי מערכת החיסון המונחים על ידי היפותזה במודלים של חרקים ברים.