23 ביוני 2016
אנו מציגים גישה להמחשת מולקולות DNA גדולות מוכתמות בפפטיד קושר DNA של חלבון פלואורסצנטי (FP-DBP) הקשורות על הפוליאתילן גליקול (PEG) ומשטח הזכוכית המצופה אבידין ונמתחות בזרימות גזירה מיקרופלואידיות.
המטרה הכוללת של הליך זה, היא ליצור מערכת ניתוח DNA נוחה למיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי, לתפעל DNA של מולקולה בודדת על משטחי זכוכית ששונו. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום הדמיית DNA. כאשר בוחנים את ה-DNA העצמי, כמו גם חלבונים קושרים DNA ומולקולות קטנות אחרות.
היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא היכולת להתבונן ולנתח DNA נע בקלות. כדי להתחיל, הנח כיסויי זכוכית על מתלה PTFE ואבטח אותם במקומם, באמצעות חתיכת סרט איטום חוט PTFE. לאחר עטיפת הכיסויים, השאירו חתיכה באורך חמישה סנטימטרים מהסרט שתשמש לטיפול במתלה במהלך הליך הניקוי.
במכסה אדים, שלבו 350 מילילטר של חומצה גופרתית ו -150 מיליליטר מי חמצן בכוס זכוכית של ליטר אחד ליצירת תמיסת תחריט פיראנה. לאחר מכן, הנח את מתלה הכיסויים לתוך התמיסה. לאחר שעתיים, רוקנו את הכוס ושטפו היטב את הכיסויים במים נטולי יונים.
המשך לשטוף את הכיסויים עד שה-PH של המים בכוס מגיע ל-PH ניטרלי. לאחר מכן, סוניקציה של מדפי הכיסויים בכוס המחברת מים למשך 30 דקות, כדי לנקות ולגזור את מצעי הזכוכית. מים ריקים מהכוס, רגע לפני אמינוסילניזציה. כדי להתחיל, הכינו את תמיסת האמינוסילניזציה, על ידי הוספת שני מיליליטר אלקוקסילן, וחומצה אצטית קרחונית של 10 מיליליטר ל -200 מיליליטר אלכוהול מתיל במיכל פוליפרופילן נקי.
לאחר מכן הנחת הכיסויים הנקיים לתוך התמיסה. לאחר מכן, הניחו את הכיסויים הנקיים בתמיסה המוכנה ונערו אותם בטמפרטורת החדר וב -100 סל"ד למשך 30 דקות. לאחר מכן, סוניקציה של המיכל עם הכיסויים הנגזרים למשך 15 דקות ב 75 וואט.
לאחר מכן, יש לנער אותם שוב בטמפרטורת החדר וב-100 סל"ד למשך 30 דקות לפחות. לאחר שתסיים, רוקן את התמיסה מהכוס ושטוף את הכיסויים שלוש פעמים, בזהירות. פעם אחת עם אלכוהול מתיל ופעמיים עם אלכוהול אתילי.
לאחר השטיפה האחרונה, אחסן את הכיסויים באלכוהול אתילי והשתמש בהם תוך שבועיים. ראשית, הכינו 10 מיליליטר מתמיסת נתרן ביקרבונט טוחנת 0.1 וסננו אותה דרך מסנן מזרק של 0.22 מיקרון. לאחר מכן, ממיסים שני מיליגרם של ביוטין PEG succinimidyl carbonate ו-80 מיליגרם של PEG succinimidyl valerate לתוך 350 מיקרו ליטר של תמיסת הנתרן ביקרבונט המסוננת.
הגן על התמיסה מפני אור באמצעות צינור הגנה מפני אור. מערבל את הצינור במרץ, למשך 10 שניות ולאחר מכן, צנטריפוגה אותו ב-10,000 x גרם למשך דקה אחת כדי להסיר בועות. לאחר מכן, יש לשטוף שקופית זכוכית עם אצטון ואחריה אלכוהול אתילי.
לאחר השטיפה, הניחו לשקופית להתייבש לחלוטין באוויר. הניחו טיפה של 50 מיקרוליטר מתמיסת ה-PEG על מגלשת הזכוכית הנקייה. הורד לאט כיסוי סילני אמינו על הטיפה בזווית קלה, כדי לא ליצור בועות אוויר מתחת לכיסוי.
לאחר מכן, הנח את המגלשות בתא ישר, חשוך ולח למשך שלוש שעות לפחות עד לילה, בטמפרטורת החדר. בסיום, אטמו את תמיסת ה-PEG הנותרת בצינור ההגנה מפני האור, ושמרו אותה על ארבע מעלות צלזיוס. לאחר הדגירה, שטפו היטב את כיסויי PEGylated במים נטולי יונים ולאחר מכן אחסן אותם במקום חשוך ויבש עד לשימוש.
על מנת ליצור את תא הזרימה, הניחו רצועות סרט דו צדדיות ודביקות על מחזיק אקרילי, כך שהוא מיושר בניצב לחורי כניסה ויציאה ולא יפריע לאף אחד מחורי התעלה. לאחר מכן, שפשפו את הקלטת, בעזרת קצה פיפט, כדי לאטום את התעלות. לאחר מכן, הנח כיסוי PEGylated, כשהצד PEGylated פונה כלפי מטה, על החלק העליון של הסרט כדי ליצור תאי זרימה.
כדי למנוע דליפה של תמיסה כלשהי, לחץ על החלק העליון של הכיסוי מעל האזור שבו מונח סרט דו צדדי. לאחר מכן, הוסף דבק אפוקסי יבש מהיר לשולי התאים, כדי לאבטח אותו במקומו. לאחר מכן, חבר חתיכת צינור באורך 2.5 ס"מ למזרק אטום לגז ואטום את המפרק בדבק אפוקסי.
לאחר מכן, חבר צינור ארוך וגמיש לצינור המגיע מהמזרק. ושוב, אטמו את המפרק בדבק אפוקסי. מלאו את הצינור המקושר למזרק במים נטולי יונים, וודאו שאין בועות אוויר.
לאחר מכן, הכנס את הצינור לחור של תא הזרימה האטום בדבק אפוקסי. והניחו קצה פיפט של 200 מיקרוליטר על החור השני, שישמש כמאגר. הגדר את קצב הזרימה של משאבת מזרק ל -50 מיקרוליטר לדקה.
לאחר מכן, הזרימו 20 מיקרוליטר של תמיסת חלבון avidin לתא ושמרו אותה שם למשך 10 דקות. לאחר מכן, טען 20 מיקרוליטר של נוקלאוטידים של אוליגו דאוקסי ביוטיניל, למזרק. הזרימו אותו לתא, ושמרו אותו שם למשך 10 דקות.
אם נעשה שימוש בטרנספראז טרמינל, דלג על העמסת נוקלאוטידים של אוליגו דאוקסי. לאחר מכן, טען 20 מיקרוליטר של תמיסת DNA למזרק, הזרים אותו לתא בקצב של 10 מיקרוליטר לדקה ושמור אותו שם למשך 30 דקות. לאחר הדגירה של 30 דקות, שטפו את תא הזרימה עם 40 מיקרוליטר של מאגר TE 1X ב-50 מיקרוליטר לדקה.
לאחר הכביסה, טען את החדר ב-40 מיקרוליטר של אותו FP-DBP בריכוז של 80 ננו-מולר, ב-1X TE.To לראות את טווח המתיחה המלא של מולקולות ה-DNA, להחיל קצבי זרימה שונים בהתאם לאורכי ה-DNA המשמשים. התבונן ב-DNA תחת עדשת אובייקטיבית של פי 60, באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי. הנה סרטון מיקרוסקופ פלואורסצנטי המציג מולקולות DNA של בקטריופאג' למבדה, קשורות לפני השטח, נמתחות על ידי זרימה לאחר קשירה עם נוקלאוטידים משלימים של אוליגו ביוטיניל.
תחת זרימה, מולקולות ה-DNA המוארכות במלואן, נמדדות באורך של 16.5 מיקרון. לעומת זאת, הבקטריופאג' T4 DNA momlecules, מוארך לאורך של 56.4 מיקרון, תחת זרימה. התארכות זו הפיכה, וניתן להאריך ולהרגיע את ה- DNA מספר פעמים.
לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להיות בעל הבנה טובה כיצד להשתמש ב- FP-DBP בניתוח DNA גדול יותר כמו גם להדגים מתיחה והרפיה של פולימר DNA.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג שיטה להדמיה של מולקולות DNA גדולות הצבועות באמצעות פפטיד קושר-DNA עם חלבון פלואורסצנטי (FP-DBP). הטכניקה כוללת קיבוע של מולקולות אלו על פני שטח זכוכית מצופה פוליאתילן גליקול (PEG) ואווידין, ומתיחתן באמצעות זרימות גזירה מיקרופלואידיות.
ויזואליזציה ישירה של מולקולות DNA גדולות הקשורות לפני השטח באמצעות פפטידים קושרי DNA המצומדים לחלבון פלואורסצנטי (FP-DBP) מאפשרת חקירה מדויקת של אינטראקציות DNA-חלבון ברמה של מולקולה בודדת. יכולת זו תומכת בתיקוף מטרות בשלבים מוקדמים ובצמצום סיכונים מכניסטיים בשרשראות הגילוי בביופארמה. השיטה משפרת את הביטחון החזוי עבור פיתוח בדיקות וזרימות עבודה של סריקה בשלבים הבאים.
שיטה זו משתלבת ברצף הגילוי, החל ממחקרים מכניסטיים מוקדמים ועד לפיתוח בדיקות ומחקר פרה-קליני, ובכך היא תומכת בזיהוי מובילים ובתיקוף מטרות.