13 febbraio 2011
Abbiamo descritto un protocollo per osservare e analizzare le traiettorie delle cellule che rotola su asimmetrici recettore fantasia substrati. I dati risultanti sono utili per l'ingegneria del recettore-fantasia substrati per etichette senza separazione delle cellule e l'analisi.
Questo protocollo osserva e analizza le traiettorie di rotolamento delle cellule su schemi asimmetrici di recettori per facilitare l'ingegnerizzazione di substrati con schemi di recettori per la separazione e l'analisi di cellule senza etichette. Si inizia con la stampa microcontattica di molecole PEG su un substrato d'oro per creare schemi alternati di monolayer autoassemblati, seguita dal riempimento del substrato con P-selectina e recettori. Successivamente, si incorpora il substrato nella camera di flusso. Si fa quindi fluire le cellule HL-60 nella camera.
Registra una sequenza di immagini dell'interazione di rotolamento delle cellule HL 60 su schemi di P-selectina e analizza le immagini convertite dal video. Le traiettorie del bordo cellulare in rotolamento, la lunghezza del tracciamento e le velocità di rotolamento su piano, regione e bordo possono essere ottenute utilizzando un programma MATLAB. Questo metodo può fornire informazioni su come le cellule HO 60 si muovono su schemi asimmetrici di recettori in flusso di taglio.
Questo può essere applicato per quantificare altre interazioni sulla superficie cellulare, per l'analisi diretta delle cellule osservando le loro traiettorie su modelli di recettori e per la progettazione di dispositivi microscopici per la separazione cellulare. La stampa microscopica per contatto viene utilizzata per creare modelli alternati di monocouche autoassemblate di molecole di peg sul substrato d'oro.
Inkia innanzitutto il timbro in PDMS con una soluzione di PEG a cinque millimoli in etanolo. Lasciare asciugare la superficie per 20 minuti. Appoggiare delicatamente il timbro sulla superficie d'oro per 40 secondi, assicurandosi che vi sia un buon contatto tra la superficie d'oro e il timbro.
Non è richiesta alcuna pressione eccessiva. Risciacquare la superficie con etanolo ed essiccare sotto un flusso di azoto. Utilizzando ora una camera di perfusione, incubare i substrati con una soluzione di P-selectina a 15 microgrammi per millilitro per tre ore a temperatura ambiente, al fine di marcare le aree rimanenti con P-selectina; risciacquare quindi la camera e riempire nuovamente le superfici con BSA a un milligrammo per millilitro per un'ora, per bloccare le interazioni non specifiche.
Risciacquare la superficie con tampone DPBS prima di eseguire l'esperimento di rolling cellulare. Assemblare la camera di flusso e quindi far passare una sospensione di 10 alla quinta cellule per millilitro. Cellule HL 60 sulla matrice, superfici in una camera di flusso rettangolare con angoli di inclinazione della matrice recettoriale di 10 gradi.
A temperatura ambiente di 24,5 gradi Celsius. Regolare la pompa a siringa per generare una portata di 75 microlitri al minuto con uno sforzo di taglio laminare corrispondente di 0,5 dine per centimetro quadrato. Ora, utilizzando un microscopio invertito dotato di telecamera montata, registrare il rotolamento delle cellule HL 60.
Interazioni con p adesivo, select e substrati. Utilizzare un obiettivo 4x a una velocità di un fotogramma al secondo per durate di 300 secondi. Eseguire tre esperimenti indipendenti.
Presentare i dati come media e deviazione standard dei valori medi ottenuti da ciascun esperimento. Le immagini al microscopio convertite dal video di HL 60.Rolling. Interazioni con substrati adesivi mostrano regioni chiare e scure corrispondenti rispettivamente al recettore p-selectina e alle regioni di PEG.
I percorsi sono delineati utilizzando un programma MATLAB personalizzato. L'angolo di inclinazione del bordo era di 10 gradi e la tensione di taglio era di 0,5 dine per centimetro quadrato. Ulteriori analisi si basano sulla distribuzione della lunghezza di tracciamento del bordo, sul valore medio della lunghezza di tracciamento del bordo, nonché su VE e VP, le velocità di rotolamento sul bordo e all'interno delle bande.
Dopo aver visionato questo video, dovresti avere una buona comprensione di come esaminare le traiettorie cellulari sui modelli asimmetrici di recettori.
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Questo protocollo osserva e analizza le traiettorie di rotolamento delle cellule su schemi asimmetrici di recettori, al fine di facilitare l'ingegnerizzazione di substrati con schemi di recettori per la separazione e l'analisi di cellule senza etichette.
Comprendere le traiettorie di rotolamento delle cellule su modelli asimmetrici di recettori permette una progettazione razionale di dispositivi di separazione microfluidici senza etichetta. Questo protocollo fornisce dati quantitativi sulla lunghezza del percorso lungo i bordi e sulla velocità di rotolamento sotto una definita tensione di taglio, sostenendo la modellazione predittiva del comportamento cellulare in flusso. Queste informazioni riducono le iterazioni empiriche nell'ingegnerizzazione dei dispositivi per flussi di lavoro di purificazione cellulare e analisi fenotipica.
Il metodo si inserisce nella fase iniziale della scoperta per guidare lo sviluppo di saggi e la generazione di strumenti preclinici, in particolare per bersagli in cui l'adesione sotto flusso rappresenta un parametro funzionale di lettura.