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膨張病理学 (ExPath) は、生体標本のサンプル調製技術であり、従来の光学顕微鏡では、ポリマー システムを使用して構造を拡張することにより、ナノスケールの構造を画像化できます。
まず、処理された免疫染色組織検体スライドを取り、タンパク質反応基とポリマー反応基の両方を含むアンカー溶液で覆います。アンカリング試薬のタンパク質反応性基は、細胞内の生体分子のアミンに結合します。
次に、適切なゲル化溶液を標本上に加え、組織内での拡散を可能にするためにインキュベートします。アンカー試薬のポリマー反応基はゲル化溶液内の遊離モノマーに結合し、重合時に生体分子がポリマーに固定できるようにします。
サンプルの重合が完了したら、スライドをプロテイナーゼ溶液で覆います。プロテイナーゼは細胞骨格タンパク質を消化して構造抵抗を取り除き、細胞が破裂することなく増殖できるようにします。酵素消化により、ゲル化したサンプルはスライドから剥離し、懸濁液に移動します。
次に、試料を顕微鏡対応容器内の適切な洗浄バッファーに移します。次に、バッファーを水に置き換えてインキュベートします。ポリマーは、その質量に比べて膨大な量の水を吸収し、膨潤します。
ポリマーが膨張すると、ポリマーネットワークに固定された生体分子は、空間的方向を維持しながら離れます。これにより、従来の光学顕微鏡で簡単に視覚化できます。
原稿の指示に従ってアンカー溶液を準備します。スライドを100ミリメートルのペトリ皿に入れます。固定溶液を組織の上にピペットで移動し、室温で少なくとも3時間インキュベートします。次に、原稿の指示に従ってゲル化溶液を調製します。
組織切片から余分な固定溶液を取り除き、スライドをペトリ皿に戻します。新鮮な冷ゲル化溶液をサンプルに加え、混合物を摂氏4度で30分間インキュベートします。サンプルの周りのスライド上にチャンバーを構築するには、ダイヤモンドナイフでカバーガラスを薄く切断してスペーサーを作成します。ティッシュの両側にあるスペーサーを水で固定し、ティッシュの上に気泡が閉じ込められないように、スライドの上にカバーガラスの蓋を慎重に置きます。
次に、サンプルを摂氏37度で加湿環境で2時間インキュベートします。カミソリの刃をカバーガラスの下にそっとスライドさせ、ゲル表面からゆっくりと持ち上げて、ゲル化チャンバーの蓋を取り外します。組織の周りのブランクゲルをトリミングして体積を最小限に抑え、方向を追跡するためにゲルを非対称に切断するようにします。
プロテイナーゼKを消化バッファーで1:200に希釈し、ゲルを完全に沈めるのに十分な溶液を調製してください。次に、サンプルを密閉容器に入れて溶液とともに摂氏60度で3時間インキュベートします。消化中にサンプルが剥がれない場合は、カミソリの刃を使用してそっと取り除きます。
柔らかい絵筆を使用して、目的のイメージングシステムと互換性があり、完全に膨張したゲルを収容するのに十分な大きさの容器に入った1X PBSに試料を移します。サンプルをPBSで10分間洗浄し、必要に応じて300ミリモルDAPIで再染色します。サンプルを余分な量の二重蒸留水で3〜5回、1回10分間洗浄してサンプルを膨らませます。次に、蛍光イメージングを実行します。