2011년 7월 11일
우리는 달리 일반 실험실 역방향 전사 반응에서 mRNA의 단일 셀 수량로부터 cDNA 수율을 높이기 위해 새로운 방법을 설명합니다. 참신은 흔들림 vortexing 또는 분쇄보다 효과적으로 microliter 비늘에서 유체를 섞어, 음향 microstreaming의 현상을 활용 micromixer의 사용에 있습니다.
이 절차는 단일 세포 수준의 mRNA 양으로부터 CD NA 수율을 높이는 방법입니다. 먼저 역전사 반응에 필요한 온도로 설정된 인큐베이터 내부에서 마이크로 믹서를 평형화하십시오. 그런 다음, 마이크로리터 부피의 단일 세포 RNA 양을 포함하는 표준 실험실 RT 반응을 준비하십시오.
반응 튜브를 혼합 홀에 안정적으로 배치하고, 적절한 혼합 파라미터를 선택한 후 마이크롬 믹서(microm mixer)의 전원을 켭니다. 궁극적으로, 이 절차는 RT 반응을 위한 준비 단계로서 정량 PCR을 통해 cDNA 수율을 높이는 데 사용될 수 있습니다. 마이크롬 믹서를 37 °C 인큐베이터에서 최소 1시간 동안 평형화하십시오.
표준 멸균 누클레아제 프리 200 µL 박벽 PCR 튜브를 사용합니다. 공급업체의 지침에 따라 역전사 반응을 준비하되, 투입되는 총 RNA 양은 단일 세포 수준으로 사용하십시오. 이제 마이크로 믹싱의 적절한 주파수와 진폭을 선택합니다.
다음으로 튜브를 마이크로 믹서에 단단히 고정합니다. 그런 다음 마이크로 믹서를 켭니다. 반응이 60분 동안 진행되도록 둡니다. 완료되면 마이크로 믹서의 전원을 끄고, 이후의 다운스트림 애플리케이션에 즉시 사용할 수 있도록 반응물을 얼음에 옮깁니다. 다른 방법들과 비교했을 때, RT 반응 맥락에서 마이크로 믹싱의 주된 장점은 cDNA 수율입니다.
본 정량적 중합효소 연쇄 반응 분석에서, neuro one mRNA를 나타내는 cDNA를 검출하도록 설계된 프라이머를 사용한 QPCR 트레이스는 RT 반응 직전의 배양 시간과 비교하여 처음 5분 또는 60분 전체 동안 microm 믹싱을 수행했을 때의 효과를 보여줍니다. 처음 5분 동안의 microm 믹싱은 유의미한 개선을 가져오지 않았습니다. 그러나 60분 전체 동안 microm 믹싱을 수행한 결과, 15 QPCR 사이클에 해당하는 유의미한 수율 향상이 나타났습니다.
또한, QPCR의 융해 곡선 분석 결과, 앞선 R two 반응의 전체 60분 동안 마이크로 믹싱을 수행한 경우 빨간색 추적선에서 보는 바와 같이 중복 시료에서 일관된 신호가 생성됨을 보여줍니다. 이는 파란색으로 표시된 초기 5분 동안의 마이크로 믹싱이나 검은색으로 표시된 단순 교반 시 관찰된 가변적인 추적선과 대조적이며, 회색 추적선은 템플릿 대조군(no template controls)입니다.
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본 논문은 마이크로믹서를 사용하여 단일 세포 mRNA로부터 cDNA 수율을 높이는 새로운 방법을 제시합니다. 이 기술은 표준 역전사 반응에서 유체 혼합을 개선하기 위해 음향 마이크로스트리밍(acoustic microstreaming)을 활용합니다.
단일 세포 mRNA로부터 cDNA 수율을 높이는 것은 표적 검증 및 표현형 스크리닝 워크플로우의 결정적인 병목 현상을 해결합니다. 세포당 더 많은 유전자를 정량적 정밀도로 분석할 수 있게 함으로써, 이 방법은 초기 발굴 결정 단계에서의 예측 신뢰도를 향상시킵니다. 이러한 접근 방식은 제한된 생물학적 샘플로부터 재현 가능하고 확장 가능한 분자 판독값을 제공하여 치료 가설의 리스크를 줄이는 것을 지원합니다.
이 방법은 초기 발견 단계의 연속성에 부합하며, 특히 기능적 스크리닝을 위한 분자 입력물의 품질과 양을 개선함으로써 타겟 가설 생성에서 리드 물질 확인으로의 전환을 지원합니다.