2012년 5월 18일
이 문서에서 우리는 assays가 열 nociception 공부를 입증 Drosophila 애벌레. 한 분석은 열 nociceptors의 (로컬) spatially - 제한 자극을 포함 1,2 반면 두 번째는 대부분의 도매 (전역) 활성화 또는 이러한 모든 뉴런을 포함 3. 함께 이러한 기술의 행동 기능의 시각화 및 부량을 허용 Drosophila nociceptive 감각 뉴런.
다음 실험의 전체적인 목적은 초파리 유충의 열 통각 수용을 분석하는 것입니다. 이는 초파리 유충을 채집한 후, 선택적인 두 번째 단계로 유해한 열 자극에 노출시킴으로써 이루어집니다. 유충에 UV 조사를 실시하여 조직 손상 및 열 통각 과민성을 유도할 수 있습니다. 다음으로, 정량적으로 측정 가능한 통각 반응을 유도하기 위해 열 프로브를 사용하여 국소적으로 자극하거나 가열판을 사용하여 전신적으로 자극할 수 있습니다.
열 프로브를 통해 유충이 열에 대한 통각 수용 반응의 한계점을 가지고 있으며, 입력 온도와 유도된 반응의 진폭 사이에 놀라운 관계가 있음이 확인되었습니다. 열판 분석에서는 유충이 주변 물의 온도와 통각 수용 감각 뉴런의 활성에 따라 정형화된 통각 수용 행동 시퀀스를 보인다는 점이 나타납니다. 본 연구에서 설명하는 방법들은 동물이 국소적으로 또는 전신적으로 제시되는 유해한 열 자극에 대해 서로 다르게 반응하는지 등 열 통각 수용 분야의 핵심적인 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.
일반적으로 열 프로브 분석(heat probe assay)을 처음 접하는 연구자는 가해지는 프로브의 압력, 위치, 도입 각도의 편차를 최소화하기 위한 숙련 과정이 필요하므로 어려움을 겪을 수 있습니다. 온도 상승에 따라 유도되는 행동을 직접 확인해야 가장 정확하게 이해할 수 있으므로, 열 플레이트 분석의 시각적 시연이 매우 중요합니다. 관심 있는 특정 유전형의 자손 유충을 충분히 확보하려면, 원하는 계통을 직접 배양하거나 알 부화 5일 후 20~30마리의 처녀 암컷과 15~20마리의 수컷을 초파리 배지가 들어있는 병에 넣어 교배를 유도하십시오. 3령 초기 유충을 수확하려면 무른 배지를 걷어내고 630 micron 공극 크기의 메쉬를 사용하여 흐르는 물에 부드럽게 걸러 세척하십시오. 이후 3령 초기 유충을 작고 습한 배지 패드로 옮겨 굶주림과 건조를 방지하십시오.
마취 챔버를 제작한 후, 포셉이나 붓을 사용하여 3령 초기 유충 10마리를 뚜껑 안쪽에 조심스럽게 배치하고 닫습니다. 흄 후드 내에서, 1.5 mL의 diethyl ether에 적신 솜 뭉치가 담긴 10 mL 비커가 들어 있는 커플링 자(coupling jar) 안에 마취 챔버를 넣습니다. 커플링 자의 캡을 돌려 잠그고 유충을 2~2.5분 동안 ether 증기에 노출시킵니다.
마취 후, Coplan jar에서 마취 챔버를 꺼내고 후드 내에서 잔류 에테르 증기가 사라질 때까지 몇 초간 둡니다. 분무기로 마취 챔버의 유충을 작은 페트리 접시로 조심스럽게 헹구어 옮깁니다. 마취된 유충의 물기를 닦아낸 후, 3인치 x 1인치 유리 현미경 슬라이드에 부착된 양면 테이프 위에 유충의 등 쪽이 위로 향하도록 조심스럽게 고정합니다.
슬라이드를 UV 조사 챔버의 바닥면에 놓고, 20 millijoules per centimeter squared 강도로 6초 동안 유충에 UV 광선을 조사합니다. 조사 후, 슬라이드를 물에 담가 양면 스카치테이프에서 유충이 부드럽게 떠오르게 합니다. 핀셋이나 붓을 사용하여 조사된 유충을 15 by 45 millimeter 용기에 조심스럽게 옮깁니다.
재숙주시키기 전, 25 °C 또는 원하는 배양 온도에서 8~24시간 동안 회복시키기 위해 1 mL의 초파리 먹이가 들어 있는 1 dram 유리 배양 바이알을 준비합니다. 열 통각 분석의 경우, 먼저 열 프로브의 온도를 원하는 설정값으로 미리 설정합니다. 붓이나 핀셋을 사용하여 개별 유충을 평평한 플랫폼 위로 조심스럽게 옮기며, 이때 유충이 얇은 수막으로 덮여 있는지 확인합니다.
압력 변동을 최소화하고 열 프로브의 정확한 위치와 각도를 확보하기 위해서는 충분한 연습이 필요합니다. 프로브 팁을 유충의 A4 분절에 부드럽게 대고, 프로브와 유충 표면이 약 45도 각도가 되도록 가벼운 압력을 가하십시오. 이 정도의 압력은 유충 표면에 약간의 함몰을 일으켜야 하며, 일반적으로 유충의 이동을 방지하기에 충분한 수준입니다.
회피 반응이 나타나거나 22번째 컷오프 지점에 도달할 때까지 유충에 계속 자극을 줍니다. 반응하는 유충은 일반적으로 먼저 머리와 꼬리를 들어 올리는 예비 행동을 보인 후, 최소 360도 회전하는 회피 행동을 보입니다. 회피 행동이 시작되면 프로브와의 접촉을 해제하고, 회피까지 걸린 잠복기 또는 시간을 기록합니다.
20초 이내에 회피 반응이 관찰되지 않으면 해당 유충은 무반응군으로 간주합니다. 충분한 고대비 조명이 확보될 수 있도록 광섬유 라이트 가이드를 배치하십시오. 유충을 관찰하려면 가열 블록의 평평한 면이 위로 향하게 하여 가열 플레이트에 넣은 다음, 가열 플레이트를 현미경 베이스 위에 올리십시오.
가열판을 고온 설정으로 켜고 온도가 95 °C에서 안정될 때까지 약 15분 동안 기다립니다. 마이크로 피펫을 사용하여 증류수 80 µL를 측정하고, 60 x 15 mm 폴리스티렌 페트리 접시 중앙에 물방울을 떨어뜨립니다. 포셉을 사용하여 깨끗한 3령 중기 유충을 물방울 중앙에 조심스럽게 놓으며, 이때 추가적인 물이 최대한 섞이지 않도록 합니다.
페트리 접시를 가열판 위의 고체 가열 블록 위에 조심스럽게 놓습니다. 유충 전체와 물방울이 시야에 들어오도록 접시의 위치를 빠르게 조정합니다. 타이머를 시작합니다.
현재, 페트리 접시를 핫플레이트의 고체 가열 블록 위에 놓고 각 행동이 시작되는 시간을 기록합니다. 다섯째, 물에 잠긴 유충을 핫플레이트로 옮기면 정형화된 운동 행동이 관찰됩니다. 열이 없는 상태에서의 정상적인 행동은 머리를 움직여 탐색하는 동작을 동반한 파라솔 운동(parasol locomotion)을 포함합니다.
다음으로는 유충이 머리를 앞쪽이나 옆쪽으로 빠르게 움직이는 헤드 스래시(Head thrash) 행동이 나타날 수 있습니다. 이 움직임은 물속에서의 일반적인 이동 방식과 유사하지만, 더 급격하게 발생하며 지속적으로 구르는 특성이 있습니다. 유충이 측면으로 최소 360도 이상 완전히 구를 때 이러한 행동이 발생하는 것으로 간주합니다.
이 동작은 가변적인 횟수로 발생할 수 있으며, 때로는 불완전한 회전이 포함되기도 합니다. 행동 점수를 매길 때는 360도 전체 회전만 계산하십시오. 이 행동은 채찍질 행동(whip behavior) 중에 열 프로브를 국소적으로 적용했을 때의 장면과 가장 유사합니다.
유충은 전후축을 따라 머리가 꼬리에 매우 짧게 접근하는 빠른 수축 및 이완 운동을 보입니다. 채찍질 동작은 종종 굴러가기 동작과 동시에 또는 빠르게 연달아 관찰됩니다. 마지막으로, 유충은 발작 행동을 보이며 이는 종종 마비로 이어집니다. 발작 행동 동안 유충은 전후축을 따라 몸을 쭉 펴고 높은 빈도의 전신 떨림을 보입니다.
굽힘 마비 없는 떨림 행동은 유충이 움직임을 멈출 때 발생합니다. 일부 유충에서는 이것이 영구적으로 지속되는 반면, 다른 유충들은 이후 저주파 맥동 운동을 보입니다. 각 범주에 속하는 반응 유충의 백분율을 나타낸 이 도표에서 유충의 열성 통각 수용 반응에는 한계점이 존재합니다. 열 프로브 분석에서 유충의 100%는 프로브 온도가 52 °C에 도달할 때까지 빠른 반응을 보입니다.
하지만 54 °C 이상의 온도에서는 20초 동안 접촉한 후에도 90% 이상의 유충이 반응하지 않습니다. 이러한 유충들은 22번째 컷오프 이후에도 계속해서 움직이지만, 구르는 횟수나 혐오 회피 행동에 소요된 시간을 측정하여 도표로 나타낼 수 있습니다. 놀랍게도, 프로브 입력 온도가 낮을수록 더 많은 횟수의 구름 반응을 유도하는 것으로 보여, 입력 온도와 반응의 강도 사이에 역관계가 있는 것으로 나타납니다.
물에 담긴 유충을 가열판으로 옮기면 다섯 가지의 정형화된 운동 행동이 관찰됩니다. 이러한 행동이 관찰되는 평균 잠복기와 본 연구에서 제시한 최적의 분석 조건 하에서 각 잠복기마다 측정된 평균 물방울 온도가 여기에 표시되어 있습니다. 각 개별 행동을 보이는 유충의 비율은 77%에서 100% 사이였으나, 때때로 구르기(rolling) 및 휘젓기(whipping) 행동이 생략되거나 중첩되거나 또는 역순으로 발생하기도 했습니다. 가열판 분석에서 마비 행동이 시작된 후 생존한 유충의 비율이 여기에 표시되어 있습니다. 유충은 마비 상태가 될 때까지 가열한 후, 회복을 위해 표준 배양 조건으로 옮겨졌습니다.
모의 처리된 유충은 열 노출을 제외하고 동일한 처리를 받았으며, 생존한 성충에서 PPE의 형성은 7일째부터 13일째까지 정량적으로 분석되었습니다. 여기서, MD G four는 4가지 클래스의 다수지성 말초 감각 뉴런 모두에서 UAS 조절 트랜스유전자의 발현을 유도합니다. UAS or one delta C는 시냅스 전달에 필요한 초파리 개방형 정류 칼륨 채널의 변형 버전을 발현하며, UAS orrc one delta NC는 시냅스 전달을 방해하지 않는 동일 채널의 추가 변형 버전을 발현합니다.
MD GALF 4 드라이버와 UAS ORC 1 delta C 트랜스진을 모두 보유한 유충만이 관찰된 5가지 행동 중 4가지에서 잠복기가 증가했다는 점에 유의하십시오. 이 영상을 시청한 후에는 유해한 열 자극에 대한 GE 유충의 국소적 및 전신적 반응을 측정하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 이러한 절차는 유전자 분석과 같은 다른 방법과 결합하여 열성 통각 수용에 필요한 유전자를 식별하는 데 사용할 수 있습니다. 열 프로브 분석을 시도할 때는 프로브의 압력, 위치 및 접촉 각도의 편차를 최소화하는 것이 중요함을 기억하십시오.
본 논문은 초파리(Drosophila) 유충의 열성 통각 수용을 연구하기 위한 분석법을 설명합니다. 해당 기술에는 열성 통각 수용기의 국소 자극 및 이러한 뉴런의 전신 활성화가 포함되며, 이를 통해 행동 반응을 시각화하고 정량화할 수 있습니다.
Drosophila 유충의 열성 통각에 대한 정량적 평가는 감각 뉴런의 기능과 행동 결과에 대한 고해상도 분석을 가능하게 합니다. 이러한 분석법은 초기 발견 단계에서 타겟 검증 및 메커니즘 위험 분석을 위한 강력한 플랫폼을 제공하며, 통증 경로 연구에 대한 예측 신뢰도를 높여줍니다. 이 접근 방식은 광범위한 전임상 모델과 관련된 보존된 통각 메커니즘을 활용함으로써 중개 연구의 연속성을 촉진합니다.
이러한 분석법들은 초기 발견에서 전임상 단계로 이어지는 연속 과정에 위치하며, 기능적 타겟 검증을 가능케 하고 통증 연구 포트폴리오의 리드 화합물 식별을 지원합니다.