24 maart 2017
We beschrijven de isolatie van de extracellulaire matrix van het hart van C57Bl/6J controlemuizen, muizen met een strakke huid en muizen met een strakke huid behandeld met het IRF5 remmende peptide. We beschrijven ook de vasodilatatiestudies op de geïsoleerde vaten van C57Bl/6J, muizen met een strakke huid en muizen met een strakke huid behandeld met het IRF5 remmende peptide.
Het algemene doel van deze procedures voor de isolatie van de extracellulaire matrix en ex vivo vasodilatatie is het bestuderen van de behandeling met het IRF5-remmende peptide bij knaagdieren. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van de vraag hoe veranderingen in de extracellulaire matrix de progressie van een ziekte kunnen versterken of verminderen. Het belangrijkste voordeel van de vasodilatiestudies is dat ze ons inzicht geven in in vivo processen zonder dat alle signaalcomponenten in overweging genomen hoeven te worden.
De isolatie van de extracellulaire matrix van het hart kan worden toegepast op andere organen, zoals de achterpoot of de long. We kregen dit idee toen we ons begonnen te richten op de duplicatie van fibrilline 1 in de tight skin-muis en de impact van een veranderde extracellulaire matrix en celgedrag erkenden. Nadat de muis is geanestheseerd en is voorbereid voor de operatie, opent u de huid met een schaar.
Snijd voorzichtig van de borst naar de zijkant van het kaakbeen, waarbij u erop let dat het onderliggende weefsel aan de voorzijde van de kaak niet wordt verstoord. Dissecteer vervolgens de arteria fascialis door het omliggende zachte weefsel te verwijderen. Wees hierbij voorzichtig om beschadiging van de slagader te voorkomen.
Bad het blootgelegde weefsel in MOPS-buffer om de vitaliteit te behouden. Zodra de arteria fascialis volledig is blootgelegd, grijpt u de arteria fascialis proximaal van de eerste bifurcatie, distaal van de plek waar de arterie zal worden doorgesneden. Snijd deze vervolgens los van de moederarterie en houd de arteria fascialis vast met de pincet.
Knip de twee takken die van de fascialis aftakken af en til het vat vervolgens voorzichtig op terwijl de verbindingen met het omliggende weefsel worden doorgesneden totdat de bifurcatie is bereikt. Knip bij de bifurcatie beide dochterarteriën door om het vat vrij te maken en breng het over naar een schaal met mops-buffer, waar het gehydrateerd blijft tot het nodig is. Om vaatverwijding te meten, dient u eerst voorbereidingen te treffen om de vaten te canuleren.
Vul glazen pipetten met een diameter van 125 tot 175 micron aan de punt volledig met MOPS-buffer. Vul daarnaast de oplossingreservoirs met MOPS. Cannuleer vervolgens de geïsoleerde vaten.
Bind ze aan glazen pipetten met behulp van ooghechtmateriaal. Zorg ervoor dat er geen luchtbellen in de pipetten ontstaan. Plaats vervolgens de vatkamers op een omgekeerde microscoop met een videocamera-accessoire.
Voer de video uit via het video-schuifmaatmeetsysteem voor een schermmeting van de vaten. Zet de vaten nu onder druk met behulp van een proces in twee stappen. Til eerst de met mops gevulde reservoirs op tot een hoogte die een druk van 20 millimeters kwik boven het vat geeft.
Open de leiding met de mops naar het vat. Terwijl het vat onder druk wordt gezet, moet u controleren op tekenen van lekkage rond de verbindingen en over de gehele lengte van het vat. Als er geen lekken worden gevonden, verhoog dan de reservoirs om een druk van 60 millimeters kwik te genereren.
Controleer vervolgens de vaten opnieuw op lekken. Zodra de druk zonder lekken wordt gehandhaafd, laat u het vat 30 minuten equilibreren bij deze druk. Nadat de equilibratie is voltooid, meet u de vaatverwijding als reactie op een verbinding van belang.
Vernauw het bloedvat eerst met een halve tot driekwart door U46619 toe te voegen. Laat de vaten zes minuten in de oplossing baden om te stabiliseren. Voeg vervolgens geleidelijk de testverbinding, zoals acetylcholine, toe aan de badoplossing.
Verhoog elke twee minuten de concentratie van de testoplossing in het bad met 10, beginnend bij 000001 molar en oplopend tot 001 molar. De veranderingen in vasodilatatie riepen vragen op over signalering. Maar onze focus ligt op het hart.
Om het gebruik van dieren te verminderen, hebben we ervoor gekozen om de cardiale extracellulaire matrix te isoleren om ons te concentreren op de signalering die van buitenaf wordt geïnitieerd. Begin met het wegnemen van het hart van een geanestheseerde muis. Breng dit over naar een bekerglas gevuld met 15 milliliters hypertoon één procent natriumlaurylsulfaat.
Houd de oplossing 18 uur lang zachtjes roerend op een roerplaat bij kamertemperatuur. Vervang de oplossing de volgende dag door 15 milliliters van 5 procent triton X100 gedurende 30 minuten, gevolgd door 15 milliliters PBS gedurende 15 minuten. Vries vervolgens de ECM en vloeibare stikstof snel in in een 1,5 milliliter microcentrifugebuis.
Zodra het weefsel is ingevroren, wordt dit overgebracht naar een vooraf gekoelde vijzel en stamper en tot een poeder vermalen. Suspendeer het poeder in een viskeuze oplossing van PBS waaraan antibiotica zijn toegevoegd in een concentratie van 1:100. Sonicate de suspensie gedurende 30 tot 60 seconden in een ijsbad bij een hoge sonication-instelling.
Het ECM-eiwit is nu geïsoleerd en moet koud blijven. Meet vóór gebruik de concentratie van het eiwit met een Bradford-assay. Het IRF5D-peptide is een inhiberend peptide dat sterk verschilt van normaal IRF5.
IRF5D bestaat uit slechts 17 aminozuren en bindt aan de fosforyleringsplaats van IRF5. Dit voorkomt fosforylering en homodimerisatie, waardoor de vorming van de actieve staat van IRF5 wordt gehinderd. Heterozygote tight skin-muizen werden gedurende drie weken subcutaan behandeld met IRF5D.
Het aantal neutrofielen en CD64 was verlaagd, zoals bepaald via immunohistochemie aan de hand van het gemiddelde aantal gekleurde cellen per gezichtsveld. Behandelingen met IRF5D verbeterden de acetylcholine-geïnduceerde vaatverwijding van de fascialis-slagaders in heterozygote tight skin-muizen die met IRF5D waren behandeld, in vergelijking met muizen die waren behandeld met fosfaatbuffer. In gecultiveerde myocyten, afgeleid van het hartweefsel van de transgene muizen, waren er meer IRF5-positieve cellen in culturen van heterozygote tight skin-muizen dan in controlemuizen.
Behandeling van beide culturen met IRF5D resulteerde in een vermindering van IRF5-positieve kernen. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u een hart kunt decellulariseren. Zodra deze techniek onder de knie is, kan deze worden overgedragen naar veel organen en helpen bij het beantwoorden van diverse vragen. En onthoud dat het belangrijk is om de matrix niet te oververteren.
U dient daarnaast een goede beheersing te hebben van het dissekeren en ophangen van de arteria fascialis. Eenmaal onder de knie, zou deze techniek ongeveer 60 minuten in beslag nemen en kan deze voor vrijwel elk vasculair bed worden toegepast. Het is belangrijk om te onthouden hoe fragiel het endotheel is; ga voorzichtig te werk tijdens de dissectie.
Het komt regelmatig voor dat er sprake is van gezonde gladde spieren en een beschadigd endotheel.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft de isolatie van de cardiale extracellulaire matrix uit diverse muismodellen en de daaropvolgende vasodilatatiestudies. De focus ligt op het begrijpen van de effecten van behandeling met een IRF5-remmend peptide op de progressie van de ziekte.
Deze methode maakt mechanistische risicoreductie van IRF5 als therapeutisch doelwit mogelijk door remodeling van de extracellulaire matrix te koppelen aan vasculaire dysfunctie bij inflammatoire fibrose. De ex vivo vasodilatatie-assay biedt kwantitatieve, reproduceerbare resultaten van de endotheelfunctie, onafhankelijk van systemische storende factoren, wat de doelwitvalidatie in preklinische modellen ondersteunt. Isolatie van ziekterelateerde extracellulaire matrix faciliteert fenotypische screening en pathway-verduidelijking voor de ontdekking van antifibrotische geneesmiddelen.
De methode is geïntegreerd in het ontdekkingscontinuüm, van targetvalidatie tot preklinische beoordeling van de werkzaamheid, wat het iteratieve ontwerp van IRF5-modulerende verbindingen mogelijk maakt op basis van vasculaire en matrixfenotypen.