25 mei 2017
Dit protocol toont een fluorescentie gebaseerde methode om de vasculatuur te visualiseren en de complexiteit ervan te kwantificeren in Xenopus tropicalis . Bloedvaten kunnen na de injectie van een fluorescerende kleurstof in het kloppende hart van een embryo worden gedetecteerd na genetische en / of farmacologische manipulaties om in vivo cardiovasculaire ontwikkeling te bestuderen.
Het algemene doel van deze procedure is om de vaatstructuur van Xenopus tropicalis kikkervisjes te visualiseren. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van cardiovasculaire biologie, zoals hoe angiogenese wordt gereguleerd. Het grote voordeel van deze techniek is dat bloedvaten in een intact embryo van het juiste type kunnen worden gevisualiseerd door een eenvoudige injectie van een fluorescerende kleurstof.
Begin door een micro loader te gebruiken om een taps toelopende glasmicropipet te vullen met ongeveer vijf microliter heldere diI geacetyleerde LDL-oplossing, zorg ervoor dat er geen geprecipiteerde deeltjes worden geladen. Gebruik onder een dissectiescoop een fijn nummer 55 tang om de punt van de pipet af te knippen om het volume van het geladen complex aan te passen en stel het onder druk gecontroleerde injectiesysteem in om ongeveer vijf nanoliter oplossing per injectie uit te stoten. Dompel vervolgens de punt van de pipet in 0,04% MS-222 in 0,1X gemodificeerd Barth's-zoutoplossing of MBS in een op maat gemaakte Sylgard-vorm.
Breng vervolgens het Xenopus tropicalis-embryo over naar de Sylgard-vorm en bevestig volledige sedatie met een gebrek aan reactie op stimulatie van de rugvin. Laad onder de dissectiescoop het embryo met de buikzijde naar boven in de V-vormige inkeping van de mal in een licht schuine positie. Plaats twee 0,1 millimeter minutian-spelden strak in een speldenhouder en gebruik een speld om de huid boven het hart te doorboren, dat zichtbaar moet pulseren.
Breng de speld door het gat in de ruimte tussen het hart en de huid zonder het hart te doorboren en plaats de ingebrachte punt binnen het gebied waar de incisie zal worden gemaakt. Wrijf vervolgens de tweede speld tegen de ingebrachte speld om een lijnvormige incisie te maken en gebruik beide spelden om de incisie voorzichtig te verbreden, waarbij het hart wordt blootgesteld. Om de DiI geacetyleerde LDL-oplossing te injecteren, steekt u de glaspipetpunt in het hart en injecteert u 50 tot 60 nanoliter van de DiI geacetyleerde LDL in ongeveer 10 uitwerppulsen.
Wanneer alle kleurstofoplossing is afgegeven, bevestigt u dat het hart nog steeds klopt en brengt u het embryo over in een nieuwe petrischaal met 0,1X MBS. Na vijf tot tien minuten zou de kikkervis zich moeten herstellen van de anesthesie en beginnen te bewegen. Nadat een geschikt aantal embryo's is geïnjecteerd, screent u de correct gelabelde geanesthetiseerde embryo's visueel onder een fluorescentiemicroscoop en gooit u alle dieren weg die andere organen hebben gelabeld.
Embryo's die onvoldoende zijn gelabeld, kunnen opnieuw worden geïnjecteerd. Vang vervolgens afbeeldingen van de correct gelabelde embryo's. Voor een grondiger beeldvorming van de bloedvaten, fixeert u de opnieuw geanesthetiseerde embryo's in 4% paraformaldehyde gedurende een uur bij kamertemperatuur, beschermd tegen licht voor visualisatie door confocale microscopie.
Als er voldoende diI geacetyleerde LDL in het hart wordt geïnjecteerd, zou de achterste cardinale ader, of PCV, onmiddellijk zichtbaar moeten zijn onder een fluorescentiemicroscoop. De intersomitische aders, of ISV's, komen dorsaal uit de PCV in een golf van voor naar achter beginnend in stadium 36 en eindigend rond stadium 40 tot 41 en worden licht vertakt rond stadium 43. De PCV en ISV's groeien in een stereotiepe angiogene patroon dat onder strikte ontwikkelingscontrole staat.
Interessant is dat de knockdown van TIE-2-signalering door antisense morphalinos de lengte en de complexiteit van de ISV's vermindert, terwijl expressie van de constitutief actieve vorm van TIE-2 overmatige ISV-vertakking induceert. Een Vein Complexiteit Index kan worden berekend om de complexiteit van de ISV's te beoordelen en weergegeven paden kunnen worden gegenereerd om de algehele architectuur van de embryonale Xenopus tropicalis-vaatstructuur te visualiseren. Het oorspronkelijke protocol werd beschreven voor gebruik van Xenopus laevis door Levin en Colics en we hebben het aangepast voor Xenopus tropicalis.
Eenmaal beheerst kan deze techniek in één uur worden voltooid als deze correct wordt uitgevoerd. Voor deze procedure kunnen genetische en farmacologische manipulaties worden uitgevoerd om aanvullende vragen te beantwoorden, zoals welke genen en signaalroutes de vasculaire ontwikkeling reguleren. Met behulp van deze procedure kan de gelabelde vaatstructuur in een intact dier in realtime worden geïmageeerd, wat een krachtig hulpmiddel biedt voor het onderzoeken van de dynamica van vasculaire ontwikkeling.
Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe diI geacetyleerde LDL in het hart van een Xenopus tropicalis-kikkervisje moet worden geïnjecteerd om de vaatstructuur te visualiseren.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol demonstreert een fluorescentiegebaseerde methode om de vasculatuur te visualiseren en de complexiteit ervan te kwantificeren in Xenopus tropicalis. De techniek maakt beeldvorming van bloedvaten mogelijk kort na de injectie van een fluorescerende kleurstof in het hart van het embryo, wat studies naar de cardiovasculaire ontwikkeling in vivo faciliteert.
Deze methode maakt directe visualisatie en kwantificering van vasculaire complexiteit in een gewervde modelorganisme mogelijk, wat vroege targetvalidatie in angiogenese-routes ondersteunt. Door kwantitatieve resultaten van vaatuitloping en vertakking te bieden, faciliteert het de mechanistische risicoreductie van vasculaire targets voordat er wordt overgegaan tot lead-identificatiecampagnes. Het Xenopus tropicalis-systeem biedt een ziekte-relevant platform voor het beoordelen van angiogene fenotypes met voorspellende betrouwbaarheid in preklinisch cardiovasculair onderzoek.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van hypothesetesten voor targets tot leadidentificatie en levert vasculaire fenotypegegevens die de go/no-go-beslissingen in programma's gericht op angiogenese onderbouwen.