17 de agosto de 2011
Este vídeo fornece um protocolo detalhado para o estudo do perfil farmacológico dos direitos humanos TRPA1 canais usando FlexStation 3. O protocolo abrange detalhes de preparação das células, carregando corante e operação do leitor de microplacas, FlexStation 3.
O objetivo geral deste procedimento é demonstrar a aplicação do Flex Station três para estudar o perfil farmacológico do canal do tipo receptor potencial transitório, ou trip a um. Isso é realizado primeiramente preparando células que expressam canais trip a um em placas de microtitulação de 96 poços.
Após lavar as células em um lavador de microplacas, as células são carregadas com o corante fluorescente sensível ao cálcio. Flu oh 4:00 AM um período de carregamento celular é seguido por várias lavagens adicionais. O próximo passo do procedimento é preparar a placa de compostos, incluindo um agonista trip a um e um antagonista trip a um putativo.
Como etapa final, os parâmetros do software são configurados para leitura da placa no sistema Flex Station três. Em última análise, podem ser obtidos resultados que demonstram relações de resposta dose-dependente para a ativação do trip A um pelo ácido flu fonêmico e inibição pelo composto antagonista A. Embora este método possa fornecer informações sobre mecanismos de ativação do 21 mediante medição da entrada de cálcio, ele também pode ser aplicado para estudar funções de outros canais iônicos permeáveis ao cálcio e receptores acoplados à proteína G, utilizando corantes congelados sensíveis ao cálcio ou corantes de potencial de membrana.
A principal vantagem desta Tática em relação a métodos existentes, como a imagem de cálcio e o mapeamento manual por patch, é que esta técnica econômica em tempo permite triagem de alto rendimento para a função e modulação de fórmulas de cálcio, canais de ferro e outros receptores mobilizadores de Ca. Antes do início deste protocolo, cultive células HEC 293 estavelmente transfectadas com trip A um até uma densidade de 70 a 90%, conforme descrito no protocolo escrito. Para iniciar o preparo das células para o ensaio de cálcio, revista placas de 96 poços pipetando 50 microlitros de poli-L-ornitina em cada poço e incube as placas a 37 graus Celsius por pelo menos 15 minutos.
Após a incubação, lave as células uma vez com solução salina tamponada com fosfato de KO. Após a tripsina, transfira a quantidade desejada de células HEC 2 93 para um tubo cônico estéril de 15 mililitros e centrifugue a amostra. Remova o sobrenadante e re-suspenda o pellet celular resultante.
No meio de cultura DMEM suplementado com 10% de soro bovino fetal inativado pelo calor, distribua 100 microlitros da suspensão celular em cada poço da placa de 96 poços. Usando um pipetador multicanal, deixe a placa repousar na câmara de fluxo laminar por pelo menos 30 minutos antes de colocá-la no incubador de cultura celular umidificado por 20 a 44 horas. Para o preparo do ensaio de cálcio, prepare primeiro as soluções conforme descrito no protocolo escrito.
Uma vez preparado, misture 10 microlitros de flu oh 4:00 AM a um milimolar com 10 microlitros de ônix. F1 27, transfira todo o conteúdo para cinco mililitros de tampão do ensaio flu. Oh quatro suplementado com 0,1% de albumina sérica bovina.
Em seguida, lave as células cultivadas em placas de 96 poços com HBSS a 80 microlitros por poço duas vezes, utilizando um lavador de microplacas. Após a lavagem, adicione a solução de marcação com fluo-4 AM a 50 microlitros por poço com uma pipeta multicanal e incube a placa a 37 graus Celsius por uma hora. Durante o período de marcação celular de uma hora, prepare uma série de soluções três vezes concentradas de agonistas, uma série de soluções três vezes concentradas de antagonistas e um grande volume de agonista 300 micromolar no tampão de ensaio com fluo-4.
300 microlitros das soluções diluídas do composto em uma placa de compostos de 96 poços. Organize para que a diluição em série de um composto e os respectivos controles positivo e negativo estejam na mesma coluna da placa de compostos sempre que possível. Como o Flex Station Three lê uma única coluna por vez, pipete 300 microlitros da solução de agonista de 300 micromolar adjacentes a cada poço contendo o antagonista como etapa final de preparação celular.
Lave as células carregadas três vezes com o tampão de ácido fluo-4 usando o lavador de microplacas após a última lavagem. Deixe 80 microlitros do tampão de ácido fluo-4 em cada poço. Para iniciar a leitura da placa, ligue o sistema Flex Station 3 e abra o software SoftMax Pro 5.2.
Salve o experimento com um novo nome de arquivo na configuração. Escolha o modo flex e insira os parâmetros para medir o efeito do agonista e do antagonista conforme listado no procedimento escrito. Em seguida, coloque uma nova caixa de ponteiras, a placa de compostos e a placa de leitura nas bandejas apropriadas da estação flex.Three.
Inicie a leitura da placa clicando no botão de leitura no software Soft Max Pro. O Flex Station três lerá uma coluna por vez e adicionará compostos nos pontos de tempo previamente programados sem interromper a leitura. Após a conclusão do experimento, os dados podem ser processados diretamente usando o software Soft Max PRO ou copiados e colados em qualquer programa de planilha, como o Microsoft Excel.
Para analisar os dados, gere curvas de resposta à concentração para o trip, um agonista ácido flu fonêmico e para o composto putativo antagonista do trip a um utilizando ajuste pelos mínimos quadrados conforme descrito no procedimento escrito trip. O trip a um é um canal catiônico permeável ao cálcio cuja ativação leva à entrada de cálcio, que pode ser detectada pelo corante sensível ao cálcio flu oh 4:00 AM. Traços representativos dos cursos temporais das alterações de fluorescência em resposta a uma série de concentrações de ácido flu fonêmico ou FFA são mostrados em concentrações mais elevadas. A FFA provocou aumento da fluorescência com cinética muito mais rápida do que em concentrações mais baixas, apesar de níveis semelhantes de pico de fluorescência.
Para distinguir essas diferenças, a relação concentração-resposta foi construída mediante a medição das taxas iniciais do aumento da fluorescência. Após a adição de concentrações variadas de FFA, a concentração efetiva máxima metade de FFA foi determinada como sendo 55,4 micromolar. Também é mostrada a relação concentração-resposta de inibição da resposta de cálcio induzida por FFA por um composto antagonista putativo trip a um, composto A.
Uma dose reduziu independentemente a resposta das células triplo A um ao FFA com uma concentração inibitória máxima de 4,3 micromolar. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como estudar os perfis farmacológicos do triplo A um e canais relacionados utilizando a estação flag três.
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Este vídeo demonstra um protocolo para estudar o perfil farmacológico de canais TRPA1 humanos utilizando o FlexStation 3. O procedimento inclui a preparação das células, carregamento com corante e operação do leitor de microplacas.
Este protocolo permite o perfilamento farmacológico de canais TRP com produtividade média a alta por meio de medidas de fluxo de cálcio, auxiliando na validação precoce de alvos e na redução de riscos mecanicistas. Ao quantificar a potência de agonistas e a inibição por antagonistas em um formato automatizado e reprodutível, fornece confiança preditiva para priorizar moduladores de canais iônicos em etapas de descoberta. A abordagem reduz a dependência de eletrofisiologia de baixa produtividade, acelerando a evolução de compostos ativos para candidatos pré-clínicos em alvos sensoriais e fisiopatológicos.
O método se insere no fluxo de trabalho de descoberta, desde a validação do alvo até a otimização do composto inicial, fornecendo uma etapa intermediária escalonável entre a confirmação de superexpressão e a validação eletrofisiológica secundária.