18 de novembro de 2011
Uma etileno glicol baseado em método de vitrificação para embriões de camundongos é descrito. É vantajoso para outros métodos, em sua simplicidade e toxicidade embrionária baixo e, portanto, pode ser amplamente aplicável a muitas cepas de camundongos, incluindo camundongos isogênicos e gene modificado.
O objetivo geral deste procedimento é criopreservar embriões de camundongo em nitrogênio líquido e descongela-los para recuperação de camundongos vivos. Isso é realizado primeiramente imergindo embriões de camundongo em meio de equilíbrio, transferindo-os para meio de vitrificação em um tubo criogênico e, em seguida, colocando-os em um tanque de nitrogênio líquido. Posteriormente, os embriões podem ser descongelados em um meio de alta osmolaridade e incubados em meio de cultura até serem transferidos para fêmeas receptoras.
No final, os resultados mostram uma sobrevivência de mais de 90% dos embriões após o descongelamento por vitrificação e taxas de natalidade entre 30 e 70% após a transferência embrionária. A principal vantagem dessa técnica é que o crioprotetor permeável glicol é menos tóxico para os embriões do que o crioprotetor convencional. A demonstração do procedimento será feita por um técnico do meu laboratório antes do início deste protocolo.
Prepare dois embriões de camundongo em cultura obtidos por acasalamento natural ou por técnicas convencionais de fertilização in vitro para um tubo de criopreservação para armazenamento futuro; adicione 50 microlitros de solução de congelamento de embriões EF S 40. Em seguida, prepare uma placa de Petri plástica de 35 milímetros ou 60 milímetros com 50 microlitros de EFS 20 à temperatura ambiente.
Use um capilar de vidro para transferir até 30 embriões para a placa. Tenha cuidado para evitar a transferência do meio de cultura. Além disso, para garantir a desidratação dos embriões, coloque-os na parte inferior da gota.
Após cerca de 60 a 90 segundos, utilize um tubo capilar para aspirar embriões desidratados. Com morfologia encolhida. Transfira esses embriões para a solução EFS no tubo criogênico, transferindo o mínimo possível de EFS 20.
Após a transferência dos embriões, deixe-os assentar no EFS 40 por um minuto antes de congelá-los em nitrogênio líquido. Antes do descongelamento dos embriões, coloque em uma placa de cultura pelo menos duas gotas de 10 microlitros de meio de cultura de embriões com alta osmolaridade, como o meio M 16. Em seguida, cubra completamente as gotas com óleo de silicone ou mineral e coloque a placa em uma incubadora de dióxido de carbono até o uso.
Em seguida, aqueça a solução TS um a 37 graus Celsius usando máscara facial e luvas criogênicas. Retire os embriões do tanque de nitrogênio líquido. Abra rapidamente o tubo criogênico e descarte qualquer nitrogênio líquido no tanque ou em um recipiente apropriado.
Em seguida, espere 30 segundos. Agora, adicione 850 microlitros da solução morna de TS um ao tubo de criovial. Aspire e expulse suavemente a solução cerca de 10 vezes para que se dissolva uniformemente.
Em seguida, transfira todo o volume para uma placa de Petri plástica de 60 milímetros. Ou espere três minutos em uma lâmina de relógio para que os embriões se equilibrem à temperatura ambiente, onde devem permanecer pelo restante do procedimento. Não utilize um dispositivo de aquecimento.
Examine rapidamente os embriões na placa sob um microscópio estereoscópico para verificar como eles se apresentam no início desta incubação. Após cerca de dois minutos de incubação, acomode os embriões agitando suavemente a placa até que o meio se espalhe pela superfície da placa. No último minuto da incubação, ejetar três gotas separadas de 50 microlitros da solução TS dois em uma placa.
Quando os três minutos terminarem, use um microscópio estereoscópico para confirmar que os embriões encolheram ligeiramente. Se os embriões ainda estiverem inchados, continue a incubação por mais um a três minutos. Agora, pegue os embriões com uma capilar de vidro e transfira-os para a primeira gota de TS dois.
Aguarde três minutos e transfira os embriões para a segunda gota. Em seguida, para a terceira gota. Por fim, retire o prato com meio para embriões preparado armazenado no incubador e utilize uma capilar de vidro para transferir os embriões para a primeira gota do meio.
Se examinados sob um estereoscópio, os embriões devem recuperar lentamente sua morfologia normal. Agora, retorne a placa ao incubador por cerca de 10 minutos. Em seguida, lave o sacarose que foi carreado do TS dois.
Transfira os embriões para a próxima gota de meio de cultura. Continue a cultura dos embriões na incubadora de CO2 até que sejam transferidos para o útero de fêmeas receptoras. Após a vitrificação e recuperação de entre 300 e 480 embriões de três linhagens diferentes de camundongos, a viabilidade foi muito alta.
Após o descongelamento, a fração de embriões que apresentavam morfologia normal estava entre 93 e 99%, e pelo menos 84% desses embriões se desenvolveram em blastocistos. Não se esqueça de que trabalhar com vazamento de nitrogênio pode ser extremamente perigoso, e são necessárias precauções para evitar contato direto e minimizar a exposição em curtas distâncias ao vazamento. O nitrogênio deve sempre ser manipulado realizando este procedimento.
Este artigo descreve um método de vitrificação baseado em etileno glicol para criopreservação de embriões de camundongo. Esta técnica é vantajosa devido à sua simplicidade e baixa toxicidade embrionária, tornando-a adequada para diversas linhagens de camundongo.
A criopreservação robusta de embriões de camundongos geneticamente diversos sustenta a continuidade da pesquisa translacional e a flexibilidade dos processos na biofármaca. A vitrificação baseada em etileno glicol permite alta sobrevivência embrionária e ampla aplicabilidade entre linhagens, apoiando o gerenciamento escalável de colônias e a preservação de recursos genéticos. Este método reduz os riscos biológicos e as barreiras operacionais para o acesso a modelos pré-clínicos em programas de descoberta e desenvolvimento.
Este protocolo de vitrificação integra-se na interface entre geração de modelos, manejo de colônias e início de estudos pré-clínicos, permitindo uma transição contínua da engenharia genética para a validação in vivo.