31 de outubro de 2025
O presente protocolo descreve uma nova abordagem para modelar a pancreatite obstrutiva crônica, que envolve a visualização do ducto pancreático e a eletrocoagulação do ducto pancreático para causar obstrução do ducto pancreático.
Existem muitos métodos para a construção de modelos animais de pancreatite crônica, incluindo injeção intraperitoneal de sódio e ligadura do ducto pancreático, que têm suas limitações. Nossa equipe desenvolveu recentemente um novo modelo de eletrocoagulação de pancreatite crônica em camundongos, que tem a vantagem de não exigir drogas de injeção prolongada ou método difícil de dominar. E eles podem facilmente estabelecer um modelo de pancreatite crônica.
O uso de coagulação elétrica para induzir pancreatite crônica em camundongos fornece um modelo mais conveniente e experimental, oferecendo um caminho promissor para futuras pesquisas neste campo. Para começar, coloque o mouse anestesiado em uma almofada de aquecimento para manter a temperatura corporal. Usando um aparador, raspe o cabelo entre o peito e a parte inferior do abdômen.
Em seguida, use uma tesoura para fazer uma incisão de dois centímetros de comprimento no abdômen central, seguida de uma incisão de um centímetro entre o abdômen superior e o apêndice xifóide. Use um expansor abdominal para localizar a área do pâncreas para eletrocoagulação. Usando um cotonete estéril, identifique o duodeno pela parte traseira do abdômen superior esquerdo e gire-o para visualizar o ducto biliar que conecta o fígado.
Oclua temporariamente o ducto colédoco proximal usando um clipe microvascular para evitar a infusão retrógrada no fígado. Conecte o tubo de polietileno de 0,25 por 0,35 milímetros a uma agulha de 0,25 milímetros e perfure a área circundante da ampola, visando a grande papila duodenal. Insira o tubo na papila e passe-o até a metade do ducto biliar e, em seguida, interrompa a entrada.
Inicie a bomba de infusão e infunda solução de azul de metileno a 0,2% até que o ducto pancreático fique azul. Após a infusão, puxe o tubo de polietileno para fora e remova o clipe microvascular. Use cotonetes estéreis para fixar o pâncreas e direcione a faca de eletrocoagulação para a área azulada.
Depois de definir os parâmetros operacionais da eletrocoagulação, use cobre puro como material do eletrodo e aplique o tratamento no pâncreas por dois a três segundos, evitando os vasos sanguíneos. Continue a eletrocoagulação até que a região manchada de azul de metileno mude de cor para amarelo ou marrom. Quando a solução de coloração azul não estiver mais visível no pâncreas, interrompa a eletrocoagulação.
Após a cirurgia, coloque o mouse em uma caixa de polietileno forrada com material de cama. Após a eletrocoagulação do ducto pancreático, anestesiar o mouse e colocá-lo em uma plataforma de operação. Para coletar sangue através do plexo orbital, segure suavemente a pele nas costas para criar uma leve saliência do globo ocular.
Em seguida, coloque a extremidade de um tubo capilar no canto do olho e insira-o suavemente sob o globo ocular em um ângulo de 30 a 45 graus. Gire o capilar até que o sangue comece a fluir. Após a coleta de sangue, feche as pálpebras aplicando uma leve pressão com gaze.
Centrifugar o sangue a 1.200 g durante 15 minutos e recolher o sobrenadante num novo tubo. Meça amilase, bilirrubina e ácido hialurônico usando kits disponíveis comercialmente, seguindo as recomendações do fabricante. Em seguida, coloque o mouse sacrificado na mesa de operação ajustada a quatro graus Celsius.
Usando tesouras e pinças, faça uma incisão em V na parede abdominal para expor a cavidade abdominal. Remova o pâncreas e divida-o em três partes para colorir. Fixe o pâncreas em solução de poliformaldeído a 4% e, em seguida, incorpore o pâncreas fixo à parafina para seccionamento.
Corte os blocos de parafina em seções de 0,5 milímetro de espessura e core-os com hematoxilina e eosina, bem como com a coloração de Masson para análise imuno-histoquímica. Observe o tecido pancreático corado sob um microscópio óptico. A coloração de hematoxilina-eosina mostrou células acinares pancreáticas dispersas e evidência de pancreatite crônica no grupo de eletrocoagulação no dia 14.
No dia 28, foram observados sinais de recuperação tecidual e reversão da patologia nas células acinares pancreáticas. A coloração de Masson revelou significativamente mais fibrose no grupo de eletrocoagulação em comparação com o grupo simulado. A coloração imuno-histoquímica mostrou níveis elevados de alfa um, colágeno tipo um e actina de músculo liso alfa no grupo de eletrocoagulação, indicando maior grau de pancreatite crônica.
Os níveis de ácido hialurônico aumentaram no grupo de eletrocoagulação, atingindo o pico por volta do dia 21, enquanto permaneceram estáveis no grupo simulado. Os níveis de bilirrubina aumentaram significativamente no dia 14 no grupo de eletrocoagulação, mostrando um pico por volta do dia 21, enquanto o grupo simulado não apresentou alterações. Os níveis de amilase no grupo de eletrocoagulação aumentaram no dia 14, seguidos por um declínio no dia 28, com o grupo simulado mostrando pouca variação.
Este protocolo descreve um método inovador para modelar pancreatite obstrutiva crônica em camundongos por meio da eletrocoagulação do ducto pancreático. Essa abordagem simplifica o processo de indução de pancreatite crônica em comparação com métodos tradicionais.
Modelos pré-clínicos robustos de pancreatite crônica são essenciais para a validação de alvos e a redução de riscos mecanicistas na descoberta precoce de fármacos. O modelo de camundongo baseado em eletrocoagulação oferece uma plataforma reprodutível e operacionalmente acessível para avaliar mecanismos da doença e intervenções candidatas. Este modelo supera limitações-chave das abordagens tradicionais, apoiando a confiança preditiva e a continuidade translacional nos portfólios de pesquisa de doenças pancreáticas.
Este modelo de eletrocoagulação se integra ao continuum de descoberta a pré-clínico para a pesquisa de doenças pancreáticas e avaliação terapêutica.