2010年4月22日
我们展示了多色流式细胞术在恒河猴中对CD4+和CD8+ T细胞的总群体及其记忆亚群进行详细表型和功能特征分析的应用价值,恒河猴是进行艾滋病疫苗研究的理想模型。
本视频演示了刺激和染色外周血单个核细胞(PBMC)的实验步骤。为了进行多色流式细胞术分析,将从全血中分离得到的PBMC置于组织培养板中。通过化学或生物学方法刺激细胞,以诱导其产生免疫应答。
刺激后,加入抗体混合物,以根据细胞表面标志物的表达来鉴定细胞类型。随后对细胞进行透化处理,并加入另一组抗体混合物,以检测细胞内细胞因子的表达,然后通过流式细胞术分析细胞,确定外周血单个核细胞(PBMC)特定亚群的细胞因子谱型。大家好,我是艾米·考特尼(Amy Courtney),来自德克萨斯大学MD安德森癌症中心免疫学系贾甘·萨斯(Jagan SAS)博士的实验室。
大家好,我是来自实验室的Hong her。今天我们将向您展示一种T细胞反应的多重细胞分析技术。我们在实验室中使用该方法来研究恒河猴(Reus Maca)的细胞免疫反应。
那么我们开始吧。首先使用血细胞计数板,通过台盼蓝染料排斥法测定来自Reuss Maca的外周血单个核细胞(pbmc)的活细胞数量。操作过程需在层流罩中进行。
将细胞重悬于完全培养基中,浓度为每毫升1000万个细胞,取100微升细胞悬液加入96孔组织培养板的每个孔中,用于非特异性刺激。然后加入100微升含有PMA和CIN的培养基,使总体积达到0.2毫升,终浓度为50纳克/毫升PMA和500纳克/毫升CIN;对于阴性对照孔,则每孔仅加入100微升完全培养基。加样后,将细胞置于37摄氏度、含5%二氧化碳的湿润环境中孵育1.5小时。
向培养物中加入终浓度为10微克/毫升的佛波酯A(felden A),并在37°C下继续孵育4.5小时。加入佛波酯A可激活细胞内的细胞因子,使其在金G装置(gold G apparatus)中通过免疫染色更易被检测。刺激完成后,离心去除培养基,然后加入200微升冷的流式洗涤缓冲液,低速离心。重复洗涤一次,最后重悬于50微升流式洗涤缓冲液中。
细胞现已准备好进行表面标志物染色,可将染色试剂加入重悬细胞的每个孔中。根据生产商的说明书,向每孔加入1 µL可固定的活死细胞蓝色荧光反应性染料。在细胞孵育期间,于4°C避光孵育30分钟。
准备将在微管中用于染色的溶液。首先,配制一种混合染色液,其中应包含以下适当成分:滴定过的荧光标记单克隆抗体,抗 CD3 PE-Cy7、抗 CD8 Alexa 700、抗 CD28 PerCP-Cy5.5、抗 CD95 APC 以及抗 CD4 Pacific Blue,并加入流式洗涤缓冲液。
接下来,制备补偿对照,通过为每种荧光标记抗体单独制备单色染色管,用于确定每种染料对其他检测通道的溢出系数。最后,制备荧光减一(FMO)对照,将所有试剂组合在一起,仅缺少待检测的目标试剂。该对照将用于确定阳性与阴性群体之间的界限,通过模拟完全染色样本中的自发荧光水平和数据来实现。
细胞在活死染料中孵育后,用冷的流式洗涤缓冲液洗涤一次,以去除多余的染料,吸去洗涤缓冲液。然后加入配制好的染色溶液,在4°C避光条件下孵育30分钟。
用预冷的流式洗涤缓冲液洗涤染色后的细胞,以去除多余的抗体。然后加入100微升BD固定破膜溶液,孵育至少10分钟。将细胞在4°C避光条件下保存,最长可保存24小时,直至后续使用;或继续进行细胞内细胞因子的标记。
首先在 100 微升 1 × 破膜缓冲液中对细胞进行透化处理。将细胞在 4°C 避光孵育 10 分钟,同时在 1 × 破膜洗涤缓冲液中制备染色抗体、补偿对照和 FMO 对照,方法同前。
细胞孵育10分钟后,离心并弃去一倍体积的破膜洗涤缓冲液。加入适量的染色抗体。随后,在避光条件下,于4°C将细胞与抗体共同孵育60分钟。
用透化溶液洗涤细胞两次。最后一次洗涤后,将细胞重悬于含1%多聚甲醛的DPBS中以固定细胞。将细胞置于4°C避光保存,最多可保存24小时,直至使用。
细胞染色后,使用 LSR 两色流式细胞仪或 Cyan ADP 流式细胞仪进行检测。然后使用 FlowJo 或类似软件分析数据。采用流式细胞分析法测定雷氏马卡中的外周血单个核细胞(PBMC)组成。
该图展示了一个代表性动物的不同T细胞亚群分析所采用的设门方案。首先通过前向散射光(FSC)与侧向散射光(SSC)对淋巴细胞进行设门,然后根据SSC及AQUA染色阴性群体确定活淋巴细胞。T细胞通过CD3表达进行鉴定,并在CD3阳性T细胞群体中进一步确定CD4阳性、CD8阴性群体以及CD4阴性、CD8阳性群体。
根据CD28和CD95的表达情况,将CD4阳性与CD8阳性T细胞进一步区分为不同的亚群,即初始型、中央记忆型和效应记忆型细胞。该图显示了未刺激以及PMA/离子霉素刺激条件下,CD4阳性T细胞及其亚群中干扰素γ和IL-2的产生情况。
注意不同细胞亚群在刺激后产生的独特细胞因子谱。我们将向您展示如何对 PBMC 进行多色流式细胞术分析。
进行此操作时,务必要记住设置单色补偿对照和荧光减一对照。这两种对照对于流式细胞术数据的正确分析都至关重要。有关选择补偿对照的更多信息,请参阅我们的书面实验方案。
此外,请注意在使用荧光标记抗体时,必须遮盖样品以避免光照。以上就是全部内容。感谢您的观看,祝您的实验顺利成功。
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本视频演示了用于刺激和染色外周血单个核细胞(PBMC)以进行多色流式细胞术分析的实验步骤。该研究重点在于对恒河猴中CD4+和CD8+ T细胞亚群的表型及功能特征进行表征,恒河猴是HIV/AIDS疫苗研究的重要模型。
多色流式细胞术能够对猕猴体内的T细胞亚群进行精确的表型和功能分析,猕猴是艾滋病疫苗研发的关键临床前模型。该方法通过量化产生细胞因子的免疫应答,支持靶点验证,并为早期发现阶段的“推进/终止”决策提供依据。该技术通过将抗原特异性刺激与特定记忆细胞群中可测量的细胞内细胞因子输出相关联,从而提高预测的可信度。
该方法位于从早期免疫特征分析到先导物鉴定的发现连续体中,支持在感染性疾病模型中进行假设验证和通路解析。