小鼠肾细胞分离:一种分离与原代培养肾小管上皮细胞的技术

0 次观看3:21 分钟 • April 30th, 2023

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为了分离肾小管上皮细胞(TECs),首先将新鲜分离的小鼠肾脏置于培养皿中。剥离包绕肾脏的薄层外膜即肾包膜,并去除肾脏最内层的髓质部分,保留含有肾小管及小管上皮细胞的皮质部分。

将剩余的肾脏组织切成小块,放入含有胶原酶的预热消化缓冲液中孵育。胶原酶可降解连接肾组织的胶原蛋白,从而将肾小管和肾细胞释放到悬浮液中。

过滤悬浮液以去除未消化的肾组织。接着,向滤液中加入预冷的培养基。较低的温度可中和胶原酶,从而停止进一步的组织消化。将滤液以低速离心,使密度较大的肾小管及管状细胞沉淀,而其他类型的细胞和杂质则保留在悬浮状态。

去除此不需要的上清液组分,加入培养基重悬沉淀。将悬液接种至胶原包被的培养皿中并进行培养。游离的肾小管细胞会牢固地附着于胶原上,而肾小管仍保持悬浮状态。通过传代培养去除未贴壁的肾小管,从而获得肾小管上皮细胞的原代培养。

处理收获的肾脏时,首先去除肾包膜和髓质。然后将两个肾脏切成微小碎片,放入10毫升消化缓冲液中,在37摄氏度、温和旋转的条件下孵育5分钟。

消化完成后,将缓冲液通过70微米滤膜以去除未消化的组织。收集消化后的组织,加入10毫升培养基以终止消化反应。接着,将滤过的组织悬液在50 × g 条件下离心5分钟,使肾小管细胞沉淀。然后,将上清液转移至新离心管中,加入5毫升培养基,并重复离心步骤,以收集残留的肾小管细胞。

现在,将第一个沉淀重悬于 20 毫升培养基中,于 50 ×g 离心 5 分钟,以进一步纯化收集的细胞。弃去上清液。随后,将两个沉淀均重悬于 10 毫升培养基中。接着,使用台盼蓝染色法计数活细胞。然后,将最多 1000 万个细胞接种至 60 毫米的胶原蛋白包被培养皿中,使管状细胞过夜贴壁。

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最后更新:22 八月 2026