CRISPR串联体介导的多基因敲除:一种通过非同源末端连接途径在小鼠肠细胞中同时敲除多个基因的技术

0 次观看4:13 分钟 • July 8th, 2025

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为了利用CRISPR-concatemer-Cas9系统同时敲除多个基因,首先准备一个含有小鼠肠细胞悬液的离心管。向该管中添加包含多个向导RNA(gRNA)表达盒的CRISPR-concatemer载体,这些表达盒以彼此相邻的方式整合。

每个gRNA表达盒均经过定制设计,可分别敲除目标基因。将编码Cas9内切酶的表达载体加入同一离心管中。对细胞-质粒混合物进行电穿孔——该技术利用电流促进质粒进入细胞。在细胞内,CRISPR串联体与Cas9载体分别表达生成gRNA序列和Cas9核酸酶。

每条gRNA序列与相应的Cas9酶结合,形成多个Cas9-gRNA复合物,这些复合物结合到宿主基因组中的靶位点。这种结合会激活Cas9酶,使其在原间隔序列邻近基序(PAM)位点上游的DNA双链上各产生一个切口,从而在靶DNA中形成双链断裂(DSB)。

在缺乏与目标基因同源序列的情况下,细胞内源性修复机制(称为非同源末端连接)将被激活,使得修复蛋白和激酶分子能够在断裂位点结合。随后,连接酶修复双链断裂,导致目标基因序列发生改变。这些改变会破坏基因功能,从而实现多个基因的敲除。

开始此操作时,向含有细胞悬液的15毫升离心管中加入9毫升低血清培养基,在室温下以400G离心3分钟。吸除所有上清液,将沉淀重悬于电穿孔溶液中。向两个新离心管中各加入总量为10微克的DNA。然后加入电穿孔溶液至终体积为100微升,并将细胞-DNA混合物置于冰上保存。

将细胞-DNA混合物转移至电穿孔比色皿中。将比色皿放入电穿孔仪的腔室内。按下电穿孔仪上的相应按钮测量阻抗,确保其值在0.030至0.055欧姆之间。根据文本方案中指示的设置进行电穿孔操作。向比色皿中加入400微升电穿孔缓冲液和ROCK抑制剂,然后将其中所有内容转移至1.5毫升离心管中。

室温孵育30分钟,使细胞恢复。30分钟后,在室温下以400 × g离心3分钟。弃去上清液,将沉淀重悬于每孔20 µL基底膜基质中。在48孔板中每孔接种约1 × 104 至 1 × 105 个细胞,并加入含EGF、Noggin、GSK-3抑制剂、ROCK抑制剂和1.25%二甲基亚砜的培养基。于37 °C孵育。

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最后更新:22 八月 2026