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植物寄生线虫(如 Ditylenchus dipsaci)是微小的蠕虫。活体蠕虫通过肌肉收缩表现出正弦波状运动,其运动能力是评估其在培养条件下健康状况的重要指标。
接触杀线虫剂——化学毒物,可能会干扰这些培养线虫的关键生物过程,影响其运动能力,从而导致其死亡。
为了筛选小分子杀线虫剂,取一个含有蒸馏水的多孔板。使用洁净的点样工具,将化学储备板中的潜在小分子杀线虫剂转移至检测板中,确保每个孔中转移的分子量一致。
将相同数量的线虫分配至平板的每个孔中。密封平板并保持湿润环境,以维持线虫的存活和活动能力。在轻微振荡条件下孵育平板,防止线虫沉降。
孵育期间,各种有毒的小分子会作用于线虫并将其杀死,而无毒的分子则无此效应。在体视显微镜下观察培养板,识别出含有非运动状态线虫群体的孔。
向检测板中加入氢氧化钠溶液——终点化学刺激剂。这会触发任何静止线虫的运动,从而将其与死亡个体区分开来。
某些孔中经氢氧化钠处理后存在非活动性线虫,证实了相应小分子作为杀线虫剂的有效性。
为制备检测板,将经高压灭菌的蒸馏水倒入无菌槽中,使用多通道移液器从槽中向平底96孔板的每个孔内加入40 µL蒸馏水。通过将金属针重复插入96孔化学储存板三次,将化合物添加至检测板中;随后将金属针在检测板中转移10次。在清洁溶液前方的纸巾上进行蘸吸。
为了统计收集样品中的线虫数量,首先将样品重悬,然后使用低吸附枪头吸取5微升溶液滴加到载玻片上。利用解剖显微镜计数5微升溶液中的线虫数量。随后,用无菌蒸馏水将浓度调整至每微升含2条线虫。
接下来,使用多通道移液器和试剂槽,将10微升样品加入96孔板的每个孔中。用湿润的纸巾包裹板子,并将其放入盒子中。然后,再添加一张湿润的纸巾以稳定板子并尽量减少移动,并将板子固定在20摄氏度、200 rpm的摇床培养箱中的粘性垫上。
第5天在解剖显微镜下观察平板,计数DMSO溶剂对照组和药物处理孔中活动的和总数的D. dipsaci数量。
如果线虫不移动,向孔中加入 2 微升 1 摩尔的氢氧化钠,使终浓度达到 40 毫摩尔,以刺激其运动。计算可移动线虫的比例。在 D. dipsaci 筛选中,重复实验中始终产生 0% 可移动线虫的孔被归类为强阳性结果。