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数字聚合酶链式反应(dPCR)可用于定量单核苷酸变异(SNVs),即基因组特定位点上的单个核苷酸发生替换,从而产生两种核苷酸变异或等位基因的突变。
开始使用芯片式数字PCR技术进行定量时,取含有单核苷酸变异(SNV)的DNA样本——即突变等位基因及相应的野生型等位基因。加入含有耐热DNA聚合酶、dNTPs和引物的混合液。
接着,加入等位基因特异性寡核苷酸探针——用不同颜色荧光标记的报告分子标记以区分不同等位基因——以及一个淬灭分子。淬灭分子与报告分子的邻近会抑制其荧光信号。
将溶液分配至微流控芯片的反应室中。每个含有等位基因的反应室均作为一个独立的反应容器。
将含有芯片的试管放入热循环仪中,并启动反应。在高温下,双链DNA解链为单链。降低温度,使引物和寡核苷酸探针与其互补区域退火结合。
在适当的延伸温度下,DNA 聚合酶延伸引物并切割探针。报告基团与淬灭基团分离后,得以发出荧光信号。
读取不同颜色的荧光信号,并创建位置图以检测含有等位基因的反应室。
为了确定突变等位基因的频率——即变异等位基因比例——计算含有突变等位基因与野生型等位基因的微腔室数量之比。
将先前设计的引物、探针和基因组 DNA 加入新的 8 孔排管中,总体积为 15 µL。用移液器吹打混匀。
将加样平台添加到新制备的8联管条中的芯片上,然后将管条放入自动加样器中。确保芯片与加样平台之间有良好接触。接着,将加样滑块放入平台中,并使用堵头将滑块固定在加样器之外。用移液器吸取15 µL PCR混合液,加至滑块尖端附近,然后按下加样器按钮,运行加样器1分钟。
运行结束后,从加样器上取下管条,并将其放入封片增强仪中。轻轻推动载玻片盖和顶盖边缘。运行封片增强仪约2分钟。如果封片不完全,表现为有液体积聚,需再额外运行1分钟。
向各管中加入 230 微升封膜液。将管条放入热循环仪中,并按照方案所述程序运行 PCR。如果阳性分区分布不均,可调整 PCR 的温度或时长。
为了检测和分析PCR产物的荧光强度,将试管条放置在检测夹具上,并加入6毫升蒸馏水。使用移液器吸头去除任何可见的气泡。
将夹具装入检测器。在检测软件中选择 荧光, 实验, 然后 样本/NTC 标签,然后单击 运行 点击按钮开始运行。运行完成后,确认位置图、直方图和二维散点图。
为收集PCR产物,从离心管中移除封口液。加入100 µL TE缓冲液,剧烈涡旋振荡30秒。将离心管在台式离心机中短暂离心,然后按照文本方案中所述步骤继续操作,完成PCR产物的收集。