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为了定量分析尿路致病性大肠杆菌(E. coli)感染小鼠膀胱组织中的免疫细胞浸润,将剪碎的组织置于含有胶原酶和脱氧核糖核酸酶的消化缓冲液中。
定期振荡孵育以破坏组织。
胶原酶消化组织的细胞外基质,释放细胞。脱氧核糖核酸酶降解干扰性的游离DNA。
孵育后,加入含有螯合剂和胎牛血清的缓冲液以灭活消化酶。
将消化后的混合物通过滤网过滤,以去除组织碎片和结缔组织,获得单细胞悬液。
离心并用含有Fc阻断抗体的缓冲液重悬细胞。这些抗体可结合免疫细胞的Fc受体,以防止非特异性抗体结合。
加入荧光标记的抗-CD45抗体,该抗体可结合免疫细胞表面的跨膜CD45蛋白。
离心并使重悬的细胞通过细胞筛,以去除细胞聚集体。
使用流式细胞仪检测免疫细胞上荧光素偶联抗体的荧光信号,以定量分析膀胱中免疫细胞的浸润情况。
为了对膀胱组织进行流式细胞术分析,在分离膀胱组织后,使用剪刀将组织充分剪碎。每管加入1个剪碎的膀胱组织,其中含有消化缓冲液,然后振荡试管,使剪碎的组织在消化缓冲液中洗涤,并将试管置于冰上,直至所有膀胱组织完成解剖和剪碎。将剪碎的膀胱组织在37°C条件下孵育60至75分钟,每隔15分钟手动剧烈振荡5秒。
当组织呈现出类似湿滤纸的玻璃样透明外观时,消化即已完成。加入 2 至 3 毫升预冷的流式细胞术缓冲液,以灭活消化酶,并轻轻混匀。随后将试管置于冰上。
为确保获得单细胞悬液并去除任何结缔组织,将管内液体通过置于15毫升锥形管上的100微米滤膜过滤。随后,用注射器活塞末端轻轻将残留组织压过滤膜。用额外2毫升流式细胞术缓冲液冲洗滤膜,并将样品置于冰上。接着,以200 × g离心洗涤样品 g 4摄氏度下孵育7分钟。
将沉淀重悬于100微升流式细胞术缓冲液中,其中含已稀释至每毫升5微克的Fc阻断剂,并转移至96孔圆底板。孵育10至15分钟后,向每份样品中加入100微升所需抗体混合液。随后,将样品置于冰上避光孵育30至45分钟。在4摄氏度下以200 × g 离心7分钟,洗涤样品。
最后,将细胞沉淀重悬于200 µL流式细胞术缓冲液中,并在上机前通过置于5 mL聚苯乙烯管上的40 µm细胞滤网过滤样品。