2011年7月28日
本文描述了一种利用与旋转盘显微镜耦合的光镊对活体病原体进行单独选择、操控和成像的方法。光镊可对生物体实现空间和时间上的精确控制,并将其定位在宿主细胞附近。荧光显微镜则能够在对细胞干扰最小的情况下,捕捉动态的细胞间相互作用。
以下实验的总体目标是利用光镊结合转盘共聚焦显微镜,实时观察宿主与病原体之间的相互作用。首先将感兴趣的病原体加入带腔室的盖玻片中,然后选择并用光镊捕获目标颗粒。
最后,将微粒引导至目标细胞。如图所示,光镊捕获可有效控制两个微粒,以观察细胞内动态相互作用。
该方法可解答传染病学和免疫学领域中宿主-病原体相互作用的重要问题,例如在完全控制宿主细胞与病原体之间空间关系的条件下,吞噬作用会受到何种影响,以及吞噬细胞摄取病原体的顺序是否会影响吞噬体的成熟过程。通常,初次接触该方法的研究者会面临一定困难,因为针对不同类型的细胞和微珠需优化捕获条件。该方法的可视化演示至关重要,特别是设置和整合旋转圆盘的操作过程。
将共聚焦显微镜与光镊系统结合较难理解,因为所有光学元件需要精确对准。收获目标病原体。例如,此处从培养物中取出过夜在肉汤中培养的 300 微升白色念珠菌,并将病原体转移至 1.5 毫升离心管中。
然后在室温下以约1300 ×g离心5分钟,洗涤病原体三次,每次离心后吸除上清液,保留沉淀,并用PBS重悬沉淀,随后进行超声处理。第三次洗涤后,将沉淀重悬于500 µL PBS中。接下来,将1毫克染料溶于100 µL二甲基甲酰胺中,配制成终浓度为10毫克/毫升的溶液。
然后向含有已洗涤病原体的反应管中加入3 µL染料混合物。由于染料对光敏感,需用铝箔包裹试管,并在37°C下振荡孵育样品1小时,随后像之前一样用PBS洗涤样品3次,并离心收集沉淀。最后一次洗涤后,将沉淀重悬于300 µL PBS中。
将培养基和PVS在水浴中预热至37摄氏度。用PBS洗涤一片10厘米的组织培养板,该培养板已包被raw 2 6 4 0.7巨噬细胞,每次洗涤后吸去PBS,共洗涤两次。接着,向培养板表面加入5毫升胰蛋白酶,于37摄氏度孵育5分钟。
然后轻轻敲击培养板的侧面,使细胞从板表面脱落,注意避免胰酶溅出培养板外。现在向培养板中加入 5 mL 培养基,并将混合液转移至反应管中。
离心后,吸除上清液,注意不要扰动沉淀,然后将沉淀重悬于10毫升培养基中。向细胞计数板的每个腔室中加入400微升培养基,再向每个腔室中加入5微升细胞悬液。将细胞置于37°C、5%CO2的培养箱中过夜培养。
从培养箱中取出腔室载玻片,用移液器将5到10微升先前制备的荧光标记的目标病原体加入每个巨噬细胞腔室中。通过上下吹打充分混匀巨噬细胞和病原体,注意不要触碰腔室底部,以免扰动已贴壁的巨噬细胞。开启共聚焦旋转盘显微镜的所有组件。
通过向油浸物镜添加镜油来准备显微镜。将腔室载玻片插入专用载物台,然后取下腔室载玻片的顶部,调整显微镜以进行微分干涉差(DIC)成像。打开光镊的快门和红外激光器。
然后打开激光器通往光镊的快门。使用红外卡检查位于红外激光器前方的快门是否已关闭。现在将焦点对准贴附在载玻片上的巨噬细胞。
然后在巨噬细胞附近的溶液中寻找自由漂浮的病原体。该实验步骤中最困难的部分是在样品腔中找到合适的追踪目标,这是由于目标物体与样品腔盖玻片之间存在粘附力。为了移动该物体,必须在光镊激光固定住物体的同时移动载物台;同时需要注意,移动载物台的速度必须足够缓慢,以确保载物台产生的拖拽力不超过光镊所能提供的最大捕获力。
移动载物台,使病原体位于光镊捕获区域附近。随后打开快门,启动光镊捕获。移动样品,使巨噬细胞与静止的被捕获病原体接触。
使用旋转盘共聚焦显微镜对病原体进行成像,成像模式为微分干涉相衬(DIC)荧光或两者结合。图中分别标记为绿色、蓝色和红色的是通常约为五微米大小的白色念珠菌(Candida albicans)不同种群。为展示成像效果,一个单独的白色念珠菌(C. albicans)被光镊捕获,并按照灰色箭头所示的方形轨迹在其他酵母细胞簇中移动,这表明即使在拥挤的环境中,操作者仍能够精确捕获并操控所选定的单个病原体的位置。为进一步说明该系统在捕获病原体不同形态结构方面的灵活性,本图中还利用光镊固定并操控了一个具有假菌丝形态的白色念珠菌(C. albicans)颗粒。
将标记了红色染料的白色念珠菌沿白色箭头所示轨迹移动,并置于荧光标记的GFPL C3原始细胞旁,后者呈绿色。当假菌丝延伸时,白色念珠菌的酵母部分被固定住。
为了分析该特定细胞系与病原体之间吞噬作用的绝对时间进程,烟曲霉也被放置在原始小鼠巨噬细胞旁边。在本图中,明场图像显示了被白箭头指示的被捕获的曲霉如何沿着红箭头所示路径移动和定位。由于光镊将生物体轻微推离焦平面,被捕获的病原体略显失焦。
将曲霉移动至目标原始细胞附近。一旦病原体与细胞接触,即关闭捕获装置。吞噬过程被激活,并采用延时成像技术观察后续的细胞事件。
30秒时,未处理细胞的细胞膜开始发生变化,围绕颗粒形成杯状结构。60秒时,杯状结构完全形成。从90秒到150秒,Afu Gotti 逐渐被吞噬,至180秒时颗粒已完全被内化。
观看本视频后,您应能充分了解如何构建旋转圆盘光镊装置,以及该仪器在开发完成后如何实现对病原体的无创操控,用于活细胞成像。该技术为宿主-病原体相互作用领域的研究人员开辟了新途径,使其能够探究宿主细胞与病原体之间空间关系的作用,以及这种空间关系对后续免疫反应的影响。
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本文介绍了一种利用光镊结合转盘共聚焦显微镜观察活体病原体与宿主细胞相互作用的方法。该技术能够实现对病原体的精确操控和实时成像,从而有助于研究动态的细胞间相互作用。
利用光镊技术和活细胞成像精确操控宿主-病原体相互作用,解决了免疫学和传染病研究中的一个关键瓶颈。该技术能够直接观察早期免疫反应,有助于在靶点验证过程中进行机制性风险评估并提高预测可信度。通过对细胞接触事件实现空间和时间上的精确控制,可增强生物制药研发管线在发现阶段研究成果的转化价值。
该方法通过高空间和时间分辨率实现对宿主-病原体相互作用的假设驱动式研究,从而在早期发现与临床前研究之间架起桥梁。