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从缓冲液中的化学固定野生型和转基因 Drosophila 胸部开始。
在转基因胸节中,背侧纵肌的神经肌肉接头含有表达突变蛋白的神经元,该突变蛋白可诱导神经变性。
移除缓冲液,并将胸部快速冷冻,以防止在切半过程中造成组织损伤。
加入新鲜缓冲液,并将胸部组织转移至解剖皿中。
将胸部腹面朝上放置,并移除神经细胞簇以暴露中线。
沿中线切开,以获得半侧胸腔。
去除多余组织。
将半胸腔置于封闭缓冲液中孵育,以通透细胞膜并防止非特异性抗体结合。
加入针对NMJ神经元中表达的糖蛋白和肌动蛋白丝的荧光素偶联抗体。
去除未结合的抗体。
将半侧胸腔置于桥式载玻片上,加入封片介质,并封固组织。
在显微镜下观察。
与野生型相比,突变体的神经元染色减弱,表明存在神经变性,而肌肉则表现出完整的荧光。
开始切片前,戴上防冻手套和护目镜,并向杜瓦瓶中加入液氮。使用刀片断裂器以一定角度夹住刀片,弯曲刀片以折断一小段。用刀片断裂器将刀片固定在适当位置,然后使用玻璃巴斯德吸管移除样本管中的全部 PBS 溶液。
使用冷冻镊子将试管浸入液氮瓶中。10秒后,用巴斯德移液管向每支冰上放置的试管中加入约300微升预冷的磷酸盐缓冲液(PBS),并将一只腹面朝上的胸部组织置于含有预冷PBS的10厘米硅胶弹性体包被的解剖皿中。使用钝头镊子固定胸部,再用精细镊子去除部分胸神经节,以暴露胸部中线。
以胸部中线为参考,用刀片在胸部三分之一处进行浅层切割,用钝头镊子将胸部调整至45度角。用刀片沿胸部中线垂直向下切割,以获得两个血胸腔,并小心地进行一至两次切割以去除多余组织,同时避免损伤背侧纵肌。然后,将肌肉组织样本放入相应标记的PBS管中。
所有胸段样本切开后,在4摄氏度下用封闭缓冲液对组织进行通透处理,时间至少一小时。孵育结束后,涡旋振荡充分混匀新配制的结构染色液,向每个样本中加入150 µL染色液,在室温避光条件下于旋转仪上孵育两小时。染色完成后,用PBST洗涤样本,并将五张叠加并切成两半的加固标签以15 mL的间隔放置在一张玻璃显微镜载片上。
使用经过改造的移液器吸头将胸部组织转移至每张载玻片上,并用实验室擦拭纸去除多余的 PBST。用镊子调整样本方向,使胸部肌肉面朝上。当样本方向正确后,使用 200 微升移液器吸头向每张载玻片加入 70 微升封片介质,并盖上盖玻片。然后,用指甲油充分涂抹盖玻片的外缘,以确保每份组织周围形成完全密封。