体外肌萎缩侧索硬化模型中突触钙动力学的荧光成像

0 次观看3:18 分钟 • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

取培养在含培养基的包被玻底培养皿中的原代啮齿类动物皮层神经元。

这些细胞表达一种基因编码的与肌萎缩侧索硬化症相关的蛋白和一种钙生物传感器。

用低钾氯化物缓冲液更换培养基。

孵育以维持神经元的静息活性和基础钙水平。

将培养皿安装在共聚焦显微镜载物台上,并放置灌流管路。

使用明场照明聚焦神经元,然后切换至荧光成像。

使用显微镜的激光激发生物传感器,并记录荧光发射,以确定细胞内钙的基线水平。

接下来,用高钾氯化物缓冲液灌注培养皿。

高钾浓度使神经元去极化,从而打开突触前末梢的电压门控钙通道。这允许钙离子内流,进而启动神经元突触活动。

升高的细胞内钙离子与生物传感器结合,引起构象变化,从而增强荧光信号。

继续记录荧光以实时测量细胞内钙离子水平的变化,从而揭示神经元突触活动。

转染GCaMP6m后48小时,用低氯化钾ACSF孵育原代啮齿类动物皮层神经元15分钟。随后将培养皿置于成像平台上,使用FITC滤光片和20倍或40倍物镜观察GCaMP6m荧光。选择成像视野并启用完美聚焦后,使用明场FITC和荧光标记通道采集单张静态图像,以标记神经元边界。

接下来,在采集软件中启动“立即运行”,进行三到五分钟的基础记录。然后按照之前所述方法,向神经元灌注含有50毫摩尔氯化钾的人工脑脊液(ACSF),并记录五分钟。当图像采集结束后,保存实验数据,并使用共聚焦软件进行后续数据分析。

进行图像分析时,打开延时图像和共聚焦软件,依次点击图像(Image)、处理(Processing)、对齐当前文档(Align Current Document)以对齐图像,然后选择“与第一帧对齐”(Align to the First Frame)。使用 ROI 选择工具沿神经突选择感兴趣区域,并标记一个代表背景荧光强度的 ROI。接着,从时间测量面板启动测量功能,以测量所选 ROI 随时间变化的原始荧光强度。测量完成后,将原始荧光强度数据导出至电子表格软件。

10:35

脑片中神经元树突的双光子钙成像

相关视频

0 观看次数

11:12

使用共聚焦显微镜以高时间分辨率记录小鼠神经肌肉接头中的钙瞬变

相关视频

0 观看次数

11:41

利用钙成像技术可视化神经元-胶质细胞环路中的动态变化

相关视频

0 观看次数

08:38

从啮齿类动物脑片中振动解离神经元以研究突触传递和成像突触前终末

相关视频

0 观看次数

09:51

监测软体动物 Aplysia 细胞内钙离子浓度变化及突触效能

相关视频

0 观看次数

02:48

转基因小鼠膈肌神经肌肉接头处钙动力学的荧光成像

相关视频

0 观看次数

05:36

秀丽隐杆线虫神经元中 PolyQ 蛋白聚集的荧光寿命成像

相关视频

0 观看次数

11:22

完整骨骼肌纤维中钙火花的评估

相关视频

0 观看次数

13:24

衰老海马神经元中亚细胞钙离子(Ca2+)的荧光与生物发光成像

相关视频

0 观看次数

09:31

使用荧光寿命成像对衰老期间 C. Elegans 中的淀粉样蛋白结构进行表征

相关视频

0 观看次数

最后更新:22 八月 2026