2012年1月23日
钙调蛋白(CaM)下拉实验是研究CaM与多种蛋白质相互作用的有效方法。该方法利用CaM-琼脂糖 beads,可高效、特异性地分析CaM结合蛋白,为探索CaM在细胞功能中的信号转导提供了重要工具。
本实验的总体目标是检测那些以钙依赖方式与钙调蛋白结合的蛋白质。该目标通过以下步骤实现:首先收集目的蛋白质,然后制备钙调蛋白琼脂糖珠用于蛋白质结合。
然后将蛋白质与钙调蛋白琼脂糖珠共同孵育。最后,洗脱以钙依赖方式与钙调蛋白结合的蛋白质。最终可通过蛋白质印迹分析获得结果,显示在有钙或无钙条件下与钙调蛋白结合的蛋白质。
与现有的其他方法(如凝胶过滤层析和免疫共沉淀)相比,该技术的主要优势在于所需蛋白质样品量更少且耗时更短。该方法有助于解答牛modlin信号传导领域中的关键科学问题,例如:哪些蛋白质以钙依赖的方式与牛modlin结合,以及翻译后修饰如何影响这些蛋白质与牛modlin的结合能力。对该方法进行可视化演示至关重要,因为磁珠操作步骤十分关键,而关于磁珠重悬与保留的操作描述若无直观展示则难以准确理解和执行。
为制备用于均一注射的器官型海马切片,需使用含有表达目标重组蛋白质粒的病毒转导组织。在此示例中,该重组蛋白为GFP标记的Neuro Grandin。在病毒注射后,让组织于约12至18小时的过夜时间内表达该蛋白,随后向培养皿中加入一毫升的解剖缓冲液。
用刀片将带有插入物的培养组织转移至培养皿中,并向插入物内加入2毫升解剖缓冲液,使组织浸没。使用倒置的巴斯德吸管轻轻刮取组织,使其从插入物膜上脱落,收集5到10片器官型海马组织切片。将悬浮的组织转移至1.5毫升微量离心管中。
接下来,将样品在1500 RCF下离心1分钟。通过小心吸除上清液,以分离组织与解剖缓冲液。注意不要扰动沉淀物。
对于每个使用的切片,用剪去尖端的1毫升移液枪将组织加入30至60微升裂解缓冲液中,然后使用研磨杵充分匀浆,再将匀浆液转移回原来的离心管中。为去除细胞碎片,将剩余匀浆液在1100 RCF下离心10分钟,并小心吸取上清液,避免接触沉淀物造成污染。取上清液的10%作为输入样品分装保存。
在制备钙调素血清珠期间,将剩余的上清液置于冰上保存以备后续使用。随后,每份免疫沉淀反应中,将400微升悬浮的钙调素血清珠溶液转移至一个底部相对平坦的2毫升微量离心管中,以最大化孵育过程中溶液与磁珠的接触表面积;轻轻旋转微量离心管使其侧向滚动,以润湿管内磁珠,然后在21,000 RCF下离心30秒。
小心地通过抽吸去除上清液。洗涤时注意不要扰动珠粒,将珠粒重悬于100微升相应的匀浆缓冲液中,缓冲液中需含有2毫摩尔的氯化钙,用于沉淀钙结合钙调蛋白结合蛋白;或含有2毫摩尔的EDTA(一种已知的钙螯合剂),用于沉淀无钙状态的钙调蛋白结合蛋白。
轻轻敲击离心管以重悬珠子。将珠子悬浮后,在1500 RCF下离心1分钟。用移液法小心吸除上清液,注意不要扰动珠子,以便使蛋白质结合到钙调蛋白球状颗粒上进行下拉。
首先将SNAT分成两等份。根据每份样品的条件,向 supernatant 中加入适量的氯化钙或EDTA,使其终浓度为2毫摩尔。将supernatant加入含有洗涤后beads的适当匀浆缓冲液中。
轻轻敲击离心管以混匀。将样品在4°C条件下于摇床中孵育3小时。每隔约30分钟重新悬浮磁珠,以提高结合效率。
接下来将样品在1500 × g条件下离心3分钟。吸取50 µL上清液作为未结合蛋白的样品,并小心吸除剩余的上清液后弃去。用100 µL相应的匀浆缓冲液将珠子洗涤3次,每次操作同前。
该实验步骤中最困难的环节是以高效的方式洗脱目标蛋白。确保成功的关键是使用合适类型的离心管以最大限度减少磁珠损失,并将磁珠充分重悬于预热的洗脱缓冲液中。提前预热洗脱缓冲液也有助于显著提高蛋白洗脱效率,向磁珠中加入 50 µL 洗脱缓冲液即可洗脱蛋白。
将原本在含有钙的缓冲液中均质并结合的样品转移至含有EDTA的缓冲液中,而原本处于含EDTA缓冲液中的样品则转移至钙溶液中。将珠子置于摇床上,室温孵育30分钟。每隔约五分钟,轻轻敲击离心管以混匀珠子。
在1500 RCF下离心珠子3分钟,然后小心吸取上清液中的50微升SNAT,用于结合蛋白样品,注意不要扰动珠子。进行SDS-PAGE和蛋白质印迹分析,以在相反条件下鉴定目标蛋白作为阳性对照。
Prop Pro蛋白是一种已知可结合钙调蛋白的蛋白。该图展示了一个钙调蛋白pull-down实验的示例,用于检测GFP标签的Neuro Grandin与内源性Neuro Grandin的钙调蛋白结合能力。均一性输入结果显示,除内源性Neuro Grandin外,GFP标记的Neuro Grandin以及钙/钙调蛋白依赖性激酶II均成功表达,这与已知的内源性Neuro Grandin结合特性相符。
在无钙条件下,GFP标记的Neuro Grandin被洗脱,而在有钙条件下未结合。相反,对照钙调蛋白依赖性激酶2仅在有钙条件下被洗脱,在无钙时则未结合。这表明钙调蛋白磁珠功能正常,且EEU具有高效性。
最重要的是,这表明 GFP 神经颗粒蛋白与无钙钙调蛋白的结合方式与其内源性形式相似,提示 GFP 标签并未改变重组蛋白的功能。一旦掌握该技术,若操作得当,不包括 SDS-PAGE 和 Western 印迹分析在内,整个实验可在六小时内完成。在进行该实验时,务必记住对所有样品和试管标记相应的实验条件,因为任何钙离子浓度的变化都可能影响整个实验结果。观看本视频后,您应能够充分理解如何高效地确定特定蛋白质以钙依赖方式结合钙调模块的能力。
通过收集目标蛋白质,将其与适当制备的共调节剂 SRO 颗粒孵育,洗脱结合的蛋白质,并利用蛋白质印迹法进行检测。
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钙调蛋白(CaM)下拉实验是一种用于研究CaM以钙依赖方式与各种蛋白质相互作用的方法。该技术利用CaM-琼脂糖 beads 高效且特异性地分析CaM结合蛋白,有助于揭示CaM在细胞功能中的信号传导机制。
理解钙依赖性蛋白质相互作用对于神经科学和信号通路中的靶点验证至关重要。钙调蛋白(CaM)下拉实验可在定义的钙条件下高效评估钙调蛋白结合蛋白,有助于在早期发现阶段降低机制风险。该方法可提供定量且可重复的数据,用于优先筛选与突触可塑性、肌肉收缩和免疫反应具有较强功能相关性的靶点。
CaM 下拉实验适用于早期发现阶段,在先导化合物确定之前评估靶点结合情况,尤其适用于钙信号通路调节剂的研究。