2017年2月26日
本文介绍了如何通过单细胞显微注射 Lucifer Yellow 来观察活细胞中经由间隙连接的细胞间通讯,并提供了一些实用技巧。我们期望本文能够帮助研究人员评估功能性间隙连接所介导的细胞耦合程度。文中所述方法原则上可适用于其他分子量低于 1,000 道尔顿的荧光染料。
您好,我叫Anael。我在奥斯瓦尔多·克鲁兹基金会的细胞通讯实验室工作。我们在此研究免疫系统和肝脏背景下P2受体和缝隙连接的功能。
今天,我将向您介绍细胞的显微注射技术。缝隙连接在突触传递、心脏收缩等生理过程中发挥着重要作用。利用该技术,我们可以研究缝隙连接是否具有功能。
好的,让我们来看一下显微注射装置的基本组件。这里我们有一台倒置荧光显微镜,用于观察细胞。这是一台CCD相机,用于记录实验结果。
我们这里有一个电流发生器,将用于把染料注入细胞。接下来是微电极的固定装置,微电极将连接于此。还有一个显微操作器,与固定装置相连,可控制微电极在三个轴向(Z、Y 和 X)上的移动。在开始实验之前,我们必须先制备微电极。
我们使用这种硼硅酸盐玻璃毛细管和名为polar的设备。将硼硅酸盐玻璃毛细管固定在此处。通过加热该钨丝,制备两个微电极。
现在加热钨丝,并在此处将玻璃管拉下,以制备两个微电极。操作简单。我们的第一步是用染料填充微电极。这里有一个小技巧:实验时只需在尖端填充几微升染料即可。
无需填满所有部分。注意细节。仅填充尖端部分。
让我们开始一个实验。这里培养皿中的细胞处于钠溶液中,银丝连接至电流发生器。
现在需要将微电极连接到前置放大器的头部支架上。在此头部支架上,还有另一根银丝与电流发生器相连。一旦微电极连接完毕,便可将其置入浴槽中。
请注意,移液器尖端正小心地接触浴液。此操作需极为谨慎,以避免移液器尖端撞击培养皿底部。一旦移液器进入浴液,我们即可前往显微镜下寻找微移液管的阴影。
我们建议首先在放大镜下开始寻找。当我们观察到移液管的阴影时,可以使用显微操作器将微电极移向细胞。当微电极非常接近细胞时,可进行一次测试脉冲,以确认微电极是否未被堵塞。
接下来我们将看到的操作中,这里我们正在观察移液器,并将其微调至非常接近细胞的位置。我们可以观察到细胞向左和向右的运动。
然后更换至荧光滤光片。可施加去极化脉冲以检测移液管尖端是否堵塞。由于微移液管已插入细胞内,可施加去极化脉冲将染料导入细胞。
我们在此使用的是游离的黄色染料。在将染料加载到细胞后,如果邻近细胞之间通过缝隙连接相连,我们等待数分钟后,即可观察到染料通过这些缝隙连接扩散,使邻近细胞逐渐变亮。在我们的实验中,可以观察到五个标有星号的细胞显示出荧光。
此处展示了胸腺上皮细胞显微注射实验的一个良好范例,见图A和B。图C和D显示了对胸腺惰性细胞进行的显微注射,注入了裂解型黄色荧光染料(loose free yellow)和另一种染料,其中间隙连接不可通透,插入图中显示了该结果。图E和F为胸腺上皮细胞系经裂解型黄色荧光染料显微注射后的结果,插入图中同时显示了裂解型黄色荧光染料和间隙连接阻断的情况。实验结果表明,裂解型黄色荧光染料未扩散至邻近细胞。
接下来,我们观察在存在地塞米松的情况下,对胸腺上皮细胞进行显微注射,并在 B 部分进行定量分析。如图 B 所示,地塞米松增加了细胞间的偶联程度。在 100 次注射中,存在该药物时,三个或四个细胞相连的情况更为常见。希望本内容能帮助初学者掌握这一研究细胞间通讯的重要技术。谢谢,再见。
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本文介绍了通过向活细胞中单细胞显微注射荧光黄(Lucifer Yellow)来可视化缝隙连接介导的细胞间通讯的技术。该方法为研究人员提供了评估功能性缝隙连接所致细胞耦合的实用建议。
单细胞显微注射可直接评估间隙连接功能,这是一种在细胞通讯中起关键作用的机制,与神经科学、免疫学和组织工程中的药物靶点验证密切相关。通过观察染料的实时扩散,研究人员能够评估化合物对细胞间偶联的影响,从而支持在早期发现阶段进行机制性风险排除。该方法可提供定量的功能性读出结果,有助于提高靶点可信度,并为临床前研发管线中的“推进/终止”决策提供依据。
该方法适用于早期发现阶段,用于在进入表型筛选或先导化合物优化之前,评估靶点对细胞间通讯的影响。