2014年9月5日
一套综合成像技术已被用于确定加勒比珊瑚息肉的形态及组织结构 Montastraeaannularis 和 M. faveolata荧光,连续块面切片, 双光子共聚焦激光扫描显微技术已鉴定出珊瑚的叶状结构、息肉壁,并估算了色素体和虫黄藻的密度及分布情况。
以下实验的总体目标是对一到两毫米厚的珊瑚虫进行三维成像,以了解其精细结构以及珊瑚色素及其定位情况。首先将样品包埋在石蜡中,然后使用切片机将其切成一微米厚的切片。接着,采用自行设计的连续块面成像技术对珊瑚虫进行成像,并重建三维图像。
通过使用多幅二维图像,获得的结果展示了该技术在不破坏珊瑚组织结构完整性的前提下,解析其精细结构细节的能力。演示该实验流程。今天将由我的研究团队合作者毛恩德·希瓦古鲁博士进行操作。
在玻璃烧杯中,将3.6克牛脂薄片置于加热板上熔化,以制备预过滤蜡液。随后,加入400毫克苏丹红四号(Sudan IV)以减少蜡的背景荧光,充分混合并静置,直至形成红色半透明溶液。
然后加入81克石蜡并充分混合。随后加入15克白色颗粒状VI棒,在同一烧杯中完全熔化。熔化后再次搅拌,得到完全混合的石蜡溶液。
现在将混合物加入玻璃瓶中,并用瓶盖 loosely 盖紧。将玻璃瓶置于 60 °C 的对流烘箱中,以保持成分处于液态,并确保所有浸润过程充分进行。该溶液可配制至 200 mL,并分装为两个 100 mL 的瓶装。
一份用于渗透,另一份用于最终包埋。加勒比海造礁珊瑚样本从AU采集,并在野外用多聚甲醛固定。为了将珊瑚组织包埋以进行SBFI成像,首先清洗在野外采集的珊瑚息肉,并将其在多聚甲醛中于4摄氏度保存。随后,当准备成像时,用PBS清洗三次,每次五分钟。
将息肉置于Ex Cal Two溶液中脱钙24小时,或直至息肉完全去除碳酸钙。将多个脱钙后的珊瑚息肉作为一个整体,依次在25%、50%、75%和100%乙醇中孵育,随后放入二甲苯中处理一次。每次处理持续30分钟,以完成样品的脱水。
接下来将处理好的息肉放入100%二甲苯中,在65°C的烘箱中孵育30分钟。随后更换为新鲜溶液,再孵育30分钟。
将息肉调整为顶部朝下,表面尽可能平放。配制二比一、一比一和一比二的二甲苯替代物与预过滤石蜡溶液。
将珊瑚息肉放入50毫升Falcon管中,依次与这三种浓度递增的预过滤石蜡孵育,随后再分别在100%预过滤石蜡中孵育三次,每次30分钟至1小时。现在将样品转移至包埋石蜡中。30分钟后取出包埋石蜡,更换为新鲜的包埋石蜡,并在65°C下继续孵育至少4小时。
随后,对组织块进行拍照。这是必要的,因为在包埋于石蜡中后,由于包埋用的红色石蜡不透明,样本的位置将变得不可见。接下来,在新的预热不锈钢包埋模具周围放置少量高熔点石蜡滴,并使其冷却。
从第二份熔化的包埋蜡中倒入少量新鲜熔化的蜡,迅速将珊瑚息肉朝下放置在白色蜡点上方。然后将塑料样品托置于不锈钢托盘上,再倒入更多包埋蜡,使蜡液上升至塑料模具的表面。随后将整个装置从65°C的烘箱中取出,置于实验台或冷却表面上冷却,直至蜡完全凝固。
随后,将干燥的组织块置于 4 摄氏度冰箱中避光保存,以备长期储存及切片。首先修整组织块,然后切取 1 微米厚的切片。使用切片机捕获包含样品的平整组织表面图像。
每次操作时,当切片被移除后,样本会在白色石蜡开始消失时显现。随后使用单色相机配合合适的荧光滤光片拍摄图像,以捕捉色素细胞或珊瑚息肉的自发荧光图像,每个样本采集三至四个脱钙的岩心样本。
进行双光子荧光成像时,将清洗后的珊瑚息肉样本倒置放入含4%多聚甲醛的带盖玻璃底培养皿中,使用双光子激光在780纳米激发波长下,通过10倍物镜以两种不同放大倍数对三至四个息肉进行成像。接着,采用拼图扫描模式,在XY方向上以10或20微米的间隔,每个焦平面采集约25至100张图像。然后在Z轴方向上以10或20微米的间隔采集50至100张图像,每个珊瑚息肉总共采集约5,000至10,000张图像。
在此图像之后,选取三到四个息肉区域,以代表一个核心及珊瑚物种。然后将所有图像以原始数据格式存储在系统的硬盘中。在此步骤中,使用方形裁剪工具对二维数据进行裁剪,通过聚焦单个息肉来减小文件大小,并将其整合为单个 TIF 文件。
在采集软件中,于 EMERIS surpass 程序模块的体积算法项目下,打开 SBFI 数据的组装文件或双光子光学切片的拼接多层 Z 栈图像,以三维形式呈现 SBFI 数据。采用阴影投影,创建一种 ISOSURFACE 模式,通过设定体素阈值生成实体表面图案。
使用剪切平面算法在 XY、XZ 和 YZ 正交模式下可视化珊瑚的三维投影,以揭示其三维结构与形态。随后,利用关键帧动画模块对投影进行动画处理。在同一 Erris 程序中,以 5% 压缩率生成视频文件,并使用体积三维和等值面模式生成 VI 格式的电影片段。
以下是来自 M Anis 和 M fa Lata 的珊瑚息肉的双光子荧光三维图像。这两幅图像在未对组分进行光谱分离的情况下,使用双光子激光在780纳米激发,并收集450至700纳米范围内的光学信号而获得;另两幅图像在相同激发条件下采集,但同时使用两个光电倍增管探测器分别收集两个组分的信号,一个为500至550纳米,另一个为650至720纳米。这些是深度编码图像。
红色代表二维图像中最浅的部分,蓝色代表最深的部分。是的。在进行该操作时,重要的是要记住正确制备包埋在红色石蜡中的样品。连续块面成像与双光子荧光显微镜技术相结合,可实现对珊瑚色素沉着及细胞结构在多种物镜尺度下的分析。
观看本视频后,您应能充分理解如何处理造礁珊瑚,以及如何对它们的三维成像及其光谱特性进行分析。
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本研究采用一系列整合的成像技术,分析环状蕈珊瑚(Montastraea annularis)和块状蕈珊瑚(M. faveolata)息肉的形态学及组织结构。所使用的方法包括荧光显微镜、连续块面成像以及双光子共聚焦激光扫描显微镜。
先进的多模态光学显微技术能够实现对复杂生物组织的高分辨率三维可视化,有助于在临床前研究中进行靶点验证和机制性风险排除。通过解析完整组织样本中的亚细胞结构和分子分布,这些方法可提高在疾病相关系统中的预测可信度。该能力有助于早期发现工作流程,其中结构和分子表型分析为先导化合物筛选和检测方法开发提供依据。
这些成像方法可融入从早期靶点验证到临床前评估的整个发现过程,实现对组织在受到扰动后响应的迭代评估。该工作流程通过将结构表型与分子检测结果关联,支持以假设为驱动的生物学研究。