2020年5月31日
珊瑚能够形成生物多样性丰富的生态系统,对人类和海洋生物都具有重要意义。然而,目前我们对许多珊瑚细胞的全部潜能和功能仍缺乏充分理解。本文介绍了一种用于分离、标记和分选石珊瑚细胞群体的实验方案。
本方案有助于在前所未有的描述性水平上实现对活体珊瑚细胞群体的鉴定与分离。该技术的主要优势在于,它能够获取此前几乎无法达到的细胞特异性水平。本次实验操作将由西尔维斯特综合癌症中心流式细胞术共享资源平台的研究助理Shannon Saigh博士演示。
为了设置用于活体珊瑚细胞分选的流式细胞仪,首先在流式细胞仪软件中打开一个新的项目模板,并在激光面板中选择适用于分析的激光器。然后,在相应的图表区域创建一个侧向散射光对前向散射光的散点图,以建立门控和分析策略。进行活体珊瑚细胞的流式细胞分析与分选时,将未染色的对照细胞样本加载至细胞仪的样品室中,并启动读取过程。
由于珊瑚细胞特别脆弱,应保持流式细胞仪的压力较低,以防止细胞裂解。在散点图中,调节光电倍增管电压,使信号点居中,然后开始记录事件。在前向散射与侧向散射散点图中,在前向散射x轴约10的4次方标记处,对细胞群设置门控。
将对照样品替换为第一个染色细胞样品,记录约 10,000 个细胞后暂停。然后圈选仅存在于染色样品组中的事件。为了分选活体珊瑚细胞,在流式细胞仪软件中选择目标细胞群后,为每个待分选的细胞群在细胞仪的收集室中放置一个含有 250 至 500 微升适当收集溶液的微量离心管。
在充分冲洗去除碎片后,开始分选目标细胞群体,收集数量可从10,000到数百万个细胞不等。每次使用新的染料、物种或分选仪时,应将至少20,000个目标细胞分选至500 µL染色液中,以便对目标细胞群进行纯度检测,并重新分析已分选的细胞,确认这些事件仍在初始分选所用的门控范围内被正确识别。对于体外研究,分选后的细胞应暂时置于冰上保存,直至转移至培养箱或无菌环境。
通过在前向散射和侧向散射图上设置门控选择,可将其他不具有珊瑚细胞相同形态或粒度的非细胞颗粒从分析中排除。通过比较未染色和染色细胞悬液的DAPI信号直方图,并圈选排除高DAPI表达的细胞,可去除死细胞。同时,可通过圈选排除远红通道中具有高信号的细胞,从而去除含有自发荧光共生虫黄藻的细胞。
经过这一迭代设门过程后,剩余的细胞代表了不含虫黄藻的完整活体珊瑚细胞群体。随后可通过检测活性氧水平和/或溶酶体含量等特征,将这些细胞分类为不同的亚群。需要特别注意的是,某些细胞比其他细胞更为脆弱,因此必须尽可能小心地进行该操作过程。
一旦分离出特定细胞,便可用于离体功能分析,例如建立细胞培养体系和构建转录组谱型。
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本研究旨在增进对珊瑚细胞的理解,这些细胞对海洋生态系统中的生物多样性至关重要。作者提出了一种分离和标记石珊瑚细胞群体的新方案,实现了前所未有的细胞特异性水平。
从复杂组织中分离特定的细胞群体在早期靶点验证和机制去风险化过程中仍然是一个关键挑战。荧光激活细胞分选(FACS)能够实现高分辨率的细胞分析,有助于准确预测通路特异性反应。这一能力可直接应用于需要对稀有或脆弱细胞类型进行精确功能检测和转录组分析的生物制药发现工作流程。
FACS 通过在每个阶段实现精确的细胞输入,将自身整合到从靶点假设验证到先导化合物鉴定直至临床前验证的发现连续过程中。